5um Streptavidin-Mikrosphären SA PS 5UM-10 1 %

5 µm Streptavidin-Mikrosphären für Durchflusszytometrie

SHBC SA PS 5UM-10 Streptavidin-Mikrosphären sind 5 µm oberflächenfunktionalisierte Mikrokügelchen, die zur Immobilisierung biotinylierter Antikörper, Antigene, Proteine, Peptide, Oligonukleotide, DNA , RNA , Aptamere und andere Biotin-markierte Biomoleküle entwickelt wurden.

Das Produkt wird als Suspension mit 1 % Feststoffgehalt geliefert und ist für Durchflusszytometrie-Bead-Assays, partikelbasierte Immunoassay-Entwicklung, Affinitätsbindungsforschung, Nukleinsäureerfassung, Biomolekül-Interaktionsanalyse und Herstellung von Forschungsreagenzien konzipiert.

Shanghai SanYu Biotechnology Co., L td. unterstützt die Auswertung von Laborproben, die Entwicklung im Pilotmaßstab, die wiederholte Produktion, OEM Projekte und die Massenversorgung für Biotechnologieunternehmen, Forschungsinstitute, Universitäten, Labore für Durchflusszytometrie, Instrumentenhersteller und Reagenzienentwicklungsorganisationen.

Schnelle Produktantwort

SA PS 5UM-10 ist eine mit 5 µm Streptavidin beschichtete Mikrokügelchensuspension mit einem Feststoffgehalt von 1 %. Die Streptavidin-funktionale Oberfläche fängt biotinylierte Biomoleküle ein und kann zur Entwicklung von Durchflusszytometrie-Bead-Assays, Sandwich-Immunoassays, Affinitätserfassungssystemen, Nukleinsäure-Hybridisierungsassays, Proteininteraktionsstudien und multiplexen partikelbasierten Forschungsplattformen verwendet werden.

Produkt-Highlights

• Produktname: 5 µm Streptavidin-Mikrosphären

• Katalognummer: SA PS 5UM-10

• Marke: SHBC

• Hersteller: Shanghai SanYu Biotechnology Co., L td.

• Nomineller Partikeldurchmesser: 5 µm

• Oberflächenmodifikation: Streptavidin

• Feststoffgehalt: 1 %

• Bindungsprinzip: Streptavidin-Biotin-Affinität

• Physische Form: Wässrige Mikrokügelchen-Suspension

• Hauptanwendung: Durchflusszytometrie-Assay-Forschung

• Lieferfähigkeit: Muster, Pilotchargen und Massenproduktion

• Individualisierung: Verfügbar je nach technischer Machbarkeit

• Verwendungszweck: Nur für Forschungszwecke

Was sind SA PS 5UM-10 Streptavidin-Mikrosphären ?

SA PS 5UM-10 besteht aus 5 µm Mikrokügelchen mit auf der Partikeloberfläche immobilisiertem Streptavidin.

Mit Streptavidin beschichtete Mikrokügelchen bieten eine praktische feste Phase zum Einfangen biotinylierter Moleküle. Forscher können einen ausgewählten biotinylierten Antikörper, ein Protein, ein Peptid, eine Nukleinsäuresonde, ein Aptamer, einen Rezeptor oder einen anderen Liganden anbringen, ohne eine direkte kovalente Aktivierung der Mikrosphärenoberfläche durchzuführen.

Nach der Ligandenimmobilisierung können die vorbereiteten Mikrosphären zum Einfangen von Zielmolekülen aus einer Probe verwendet werden. Die Zielbindung kann dann mit einem fluoreszierenden Antikörper, einer fluoreszierenden Sonde, einem Sekundärreagenz oder einem anderen kompatiblen Reporter nachgewiesen und durch Durchflusszytometrie analysiert werden.

Mögliche biotinylierte Liganden umfassen:

• Monoklonale und polyklonale Antikörper

• Rekombinante Antikörper

• Antikörperfragmente

• Antigene

• Rekombinante Proteine

• Peptide

• Enzyme

• Rezeptoren

• L Ektine

• Oligonukleotidsonden

• DNA Sonden

• RNA Sonden

• PCR Produkte

• Aptamere

• Biotinylierte kleine Moleküle

Der Partikeldurchmesser von 5 µm sorgt für eine Population im Mikrometerbereich, die auf vielen herkömmlichen Durchflusszytometern im Allgemeinen vom Hintergrund kleiner Partikel unterschieden werden kann.

Im Vergleich zu kleineren Partikeln bieten 5 µm Mikrokügelchen möglicherweise eine einfachere Streuerkennung, eine bequemere Ansteuerung und eine praktischere Partikelrückgewinnung beim Waschen. Allerdings unterscheiden sich die Partikelanzahl pro Masseneinheit, das Absetzverhalten, die Bindungskapazität und die Assaykinetik von denen kleinerer Mikrokügelchen und sollten für die beabsichtigte Anwendung bewertet werden.

SA PS 5UM-10 wird als Forschungsrohstoff geliefert. Es handelt sich nicht automatisch um ein fertiges Diagnosereagenz, zertifiziertes Kalibrierkügelchen, absoluten Zählstandard, fluoreszierendes Kodierungskügelchen oder magnetisches Trennprodukt.

SA PS 5UM-10 Technische Spezifikationen

Die folgenden Parameter sollten anhand der endgültigen Produktspezifikation oder des chargenspezifischen Analysezertifikats bestätigt werden:

• Partikel Material

• Gemessener mittlerer Partikeldurchmesser

• Partikel -Größenbereich

• Partikel -Größenverteilung

• Partikel -Größenvariationskoeffizient

• Streptavidin-Beschichtungsniveau

• Biotin-Bindungskapazität

• Partikel Zahlenkonzentration

• Aufhängepuffer

• Puffer-pH

• Stabilisator oder Tensid

• Konservierungsmittel

• Packungsgröße

• Haltbarkeit

• Lagerbedingungen

Die Bindungskapazität sollte zusammen mit der Testsonde, der Testmethode, der Berechnungsgrundlage und dem chargenspezifischen Ergebnis angegeben werden.

Die Feststoffkonzentration von 1 % allein kann weder die Partikelanzahlkonzentration noch die verfügbare Biotin-Bindungskapazität bestimmen.

Wie die Streptavidin-Biotin-Bindung funktioniert

Streptavidin ist ein Biotin-bindendes Protein. Wenn ein biotinylierter Ligand mit SA PS 5UM-10 gemischt wird, bindet die Biotingruppe an verfügbare Streptavidinstellen auf der Mikrosphärenoberfläche.

Die Grundstruktur kann wie folgt dargestellt werden:

Mikrosphärenoberfläche – Streptavidin – Biotin – Capture L Igand

Für einen Sandwich-Immunoassay kann die Struktur wie folgt aussehen:

Mikrosphäre – Streptavidin – Biotinylierter Capture-Antikörper – Zielantigen – Fluoreszenzdetektionsantikörper

Die mit jeder Mikrosphäre verbundene Fluoreszenz kann dann durch Durchflusszytometrie gemessen werden.

Vorteile der Streptavidin-Biotin-Immobilisierung

• Normalerweise ist für die Ligandenbeladung keine EDC/NHS Aktivierung erforderlich.

• Eine Mikrosphärenplattform kann mit verschiedenen biotinylierten Liganden verwendet werden.

• Es können Antikörper, Proteine, Peptide und Nukleinsäuresonden immobilisiert werden.

• L Igandbeladung kann unter milden wässrigen Bedingungen durchgeführt werden.

• Fängermoleküle können geändert werden, ohne dass das Basispartikel neu gestaltet werden muss.

• Das System unterstützt die modulare Assay-Entwicklung.

• Die Plattform kann in der Single-Target- und Multiplex-Forschung eingesetzt werden.

• Immobilisierte Liganden können mit verschiedenen Fluoreszenzreportern kombiniert werden.

Die endgültige Leistung hängt ab von:

• Streptavidin-Aktivität

• Streptavidin-Beschichtungsdichte

• Biotinylierungsgrad

• Zugänglichkeit von Biotin

• L Igand-Molekülgröße

• Distanzstücklänge

• Überfüllung an der Oberfläche

• Pufferzusammensetzung

• Inkubationsbedingungen

• Zielkonzentration

• Beispielmatrix

Freies Biotin in der Ligandenlösung, Probe, dem Puffer oder der Blockierungsformulierung kann verfügbare Streptavidin-Bindungsstellen besetzen und die Immobilisierung des Liganden verringern.

Warum 5 µm Streptavidin-Mikrosphären wählen?

Klare Erkennung auf herkömmlichen Durchflusszytometern

Der Partikeldurchmesser von 5 µm kann auf vielen herkömmlichen Durchflusszytometern eine ausgeprägte Vorwärts- und Seitenstreupopulation liefern.

Dies kann es einfacher machen:

• L lokalisieren die Mikrosphärenpopulation

• Richten Sie ein stabiles Streutor ein

• Trennen Sie Mikrokügelchen von kleinen Rückständen

• Bestätigen Sie die Partikelwiederherstellung

• Identifizieren Sie mögliche Aggregate

• Bewerten Sie Dubletten

• Messen Sie die Reporterfluoreszenz

• Erstellen Sie wiederholbare Erfassungsvorlagen

Die tatsächliche Erkennung hängt vom Partikelmaterial, dem Brechungsindex, der Optik des Durchflusszytometers, den Detektoreinstellungen, der Triggerauswahl und dem Probenpuffer ab.

Praktische Größe für Bead-basierte Assays

Der Größenbereich von 5 µm eignet sich für viele partikelbasierte Forschungsabläufe in der Durchflusszytometrie.

Die Partikel bieten eine physikalische Oberfläche für die Immobilisierung von Fängerliganden und bleiben gleichzeitig klein genug für Suspensionsreaktionen und Einzelpartikelanalysen.

Einfachere Partikel Wiederherstellung

Mikrometergroße Partikel lassen sich möglicherweise leichter durch eine validierte Zentrifugation oder ein membranbasiertes Verfahren zurückgewinnen als kleinere Partikel.

Partikel Die Wiederherstellung hängt immer noch von Folgendem ab:

• Partikel Dichte

• Partikel Material

• Zentrifugalkraft

• Zentrifugationszeit

• Verarbeitungsvolumen

• Rohrgeometrie

• Rohroberfläche

• Pufferviskosität

• Tensidkonzentration

• Anzahl der Waschschritte

Die Trennmethode sollte experimentell überprüft werden.

Geeignet für Studien zum Zellgrößenbereich

Eine 5 µm Mikrokugel kann in der Zellanalyse und Partikelinteraktionsforschung als synthetisches Partikel in Mikrometergröße bewertet werden.

Allerdings reproduzieren synthetische Mikrosphären nicht die vollständigen physikalischen oder biologischen Eigenschaften von Zellen, einschließlich Verformbarkeit, Dichte, Membranzusammensetzung, Rezeptormobilität oder biologische Aktivität.

Flexible L Igand-Auswahl

Das gleiche SA PS 5UM-10-Basispartikel kann mit verschiedenen biotinylierten Fängermolekülen kombiniert werden, wodurch mehrere Assays auf einer Partikelplattform entwickelt werden können.

Unterstützt die Skalierung von der Forschung zur Produktion

Das Produkt kann Folgendes unterstützen:

• Erste Machbarkeitsprüfung

• Assay-Optimierung

• Pilotserienproduktion

• Stabilitätsprüfung

• Verpackungsbewertung

• Chargenvergleich

• OEM Entwicklung

• L langfristige Massenversorgung

Hauptmerkmale und Vorteile

5 µm Nenn- Partikel Durchmesser

Die mikrometergroßen Partikel eignen sich für das Durchflusszytometrie-Gating, partikelbasierte Bindungsstudien, die Entwicklung von Immunoassays und die Affinitätserfassungsforschung.

Streptavidin-funktionale Oberfläche

Die Oberfläche fängt biotinylierte Antikörper, Proteine, Peptide, Oligonukleotide, DNA , RNA , Aptamere und andere biotinhaltige Moleküle ein.

1 % Feststoffsuspension

SA PS 5UM-10 wird mit 1 % Feststoffgehalt geliefert und kann je nach erforderlicher Partikelanzahl, Assayvolumen, Bindungskapazität und Durchflusszytometrie-Ereignisrate verdünnt werden.

Einfache L Igand-Immobilisierung

Biotinylierte Liganden können ohne direkte Carbodiimid-Aktivierung durch den Endbenutzer geladen werden.

Modulare Assay-Plattform

Forscher können dieselbe Partikelplattform mit verschiedenen biotinylierten Fängermolekülen verwenden.

Geeignet für die Erkennung fluoreszierender Reporter

Die Partikel können mit fluoreszierenden Antikörpern, Sonden, Sekundärreagenzien oder anderen Reportern für die Durchflusszytometrieanalyse kombiniert werden.

Geeignet für Singleplex- und Multiplex-Forschung

SA PS 5UM-10 kann als eine Partikelpopulation in einem Multiplex-Durchflusszytometriesystem ausgewertet werden.

Fähigkeit zur Massenfertigung

SHBC unterstützt Muster, Pilotchargen, Nachbestellungen, kundenspezifische Produktion und Massenlieferung.

Benutzerdefinierte Entwicklungsoptionen

Partikel Durchmesser, Konzentration, Streptavidinbeladung, Bindungskapazität, Puffer, Konservierungsmittel, Fluoreszenzkodierung, Verpackung und Freisetzungsspezifikationen können für qualifizierte Projekte besprochen werden.

Anwendungen in der Durchflusszytometrieforschung

Bead-basierte Sandwich-Immunoassays

SA PS 5UM-10 kann als feste Phase in einem durchflusszytometrischen Sandwich-Immunoassay verwendet werden.

Ein typischer Arbeitsablauf umfasst:

1. Immobilisierung eines biotinylierten Fängerantikörpers.

2. Blockierung der verbleibenden Partikeloberfläche.

3. Inkubieren der Partikel mit der Probe.

4. Erfassung des Zielanalyten.

5. Hinzufügen eines fluoreszierenden Nachweisantikörpers.

6. Entfernen ungebundener Reagenzien.

7. Messung der Mikrosphären-assoziierten Fluoreszenz mittels Durchflusszytometrie.

Mögliche Forschungsziele sind:

• Zytokine

• Hormone

• Wachstumsfaktoren

• Antikörper

• Antigene

• Enzyme

• Biomarker

• Pathogen-assoziierte Proteine

• Enviro nm Entalanalyten

• Ziele zur Lebensmittelsicherheit

• Forschungsverbindungen

Wettbewerbsfähige Assay-Entwicklung

SA PS 5UM-10 kann auch in kompetitiven Bindungsformaten bewertet werden.

Kompetitive Tests können in Betracht gezogen werden für:

• Kleine Moleküle

• Haptene

• Peptide

• Drogen

• Giftstoffe

• Hormone

• Ziele mit begrenzten Bindungsstellen

Die Beziehung zwischen Zielkonzentration und Fluoreszenzsignal hängt vom endgültigen Assay-Design ab.

Immobilisierung biotinylierter Antikörper

Biotinylierte Antikörper können an SA PS 5UM-10 gebunden werden für:

• Antigennachweis

• Antikörper-Screening

• Hybridom-Screening

• Biomarkerforschung

• Capture-Antikörper-Vergleich

• Machbarkeitsstudien für Assays

• Spezifitätsbewertung

• Kreuzreaktivitätstest

• Affinitätsvergleich

Protein- und Peptid-Wechselwirkungsforschung

Biotinylierte Proteine ​​und Peptide können immobilisiert werden für:

• Studien zur Antikörper-Antigen-Interaktion

• Protein-Protein-Bindung

• Rezeptor-Ligand-Forschung

• Epitopkartierung

• Studien zur Enzyminteraktion

• Inhibitor-Screening

• Bewertung von Medikamentenkandidaten

• Vergleich der Bindungsaffinität

Nukleinsäure-Erfassung

Biotinylierte Oligonukleotide, DNA , RNA , PCR Produkte und Aptamere können an SA PS 5UM-10 angehängt werden.

Mögliche Forschungsanwendungen umfassen:

• Sequenzspezifische Erfassung

• Entwicklung eines Hybridisierungsassays

• PCR -Produkterkennung

• Genotypisierungsforschung

• Mutationserkennungsforschung

• Aptamer-basierte Assays

• DNA – Proteininteraktionsstudien

• RNA -Bindungsstudien

• Entwicklung molekularer Assays

Zellbindungsforschung

Wenn die Partikel mit einem geeigneten biotinylierten Antikörper, Rezeptor, Liganden oder Lektin beschichtet sind, können sie auf ihre Bindung an Zellen oder Zelloberflächenziele untersucht werden.

Wichtige Parameter sind:

• Fängerligandendichte

• Verhältnis von Mikrokügelchen zu Zellen

• Zellkonzentration

• Inkubationstemperatur

• Inkubationszeit

• Mischmethode

• Waschbedingungen

• Lebensfähigkeit der Zellen

• Unspezifische Partikelanlagerung

Multiplex-Durchflusszytometrie

Verschiedene Mikrosphärenpopulationen können potenziell unterschieden werden durch:

• Partikel Durchmesser

• Interne Fluoreszenzfarbe

• Interne Fluoreszenzintensität

• Sichtbare Partikelfarbe

• Ligand einfangen

• Reporterfluoreszenz

Bei der Multiplex-Forschung sollte jede Partikelpopulation nach Ligandenbeladung, Blockierung, Probeninkubation, Reporterfärbung, Waschen, Lagerung und Durchflusszytometrie-Erfassung unterscheidbar bleiben.

Affinitätserfassung und -screening

SA PS 5UM-10 kann auch bewertet werden in:

• Affinitätsbindungstests

• L Liganden-Screening

• Antikörper-Screening

• Hochdurchsatzforschung

• Partikel -basierte Biosensoren

• Mikrofluidische Tests

• Studien zur Biomolekülanreicherung

• Bildbasierte Partikelassays

Kompatible biotinylierte Biomoleküle

Biotinylierte Antikörper

Zu den kompatiblen Formaten können gehören:

• IgG in voller Länge

• IgM

• Tolle Fragmente

• F(ab′)₂-Fragmente

• Rekombinante Antikörper

• Einkettige variable Fragmente

• Einzeldomänen-Antikörper

• Andere technische Antikörperformate

Die Antikörperaktivität nach der Immobilisierung hängt von der Biotinylierungsmethode, der Anzahl der Biotingruppen, der Biotinposition, dem Spacer-Design und der Proteinstabilität ab.

Biotinylierte Proteine

Mögliche Beispiele sind:

• Antigene

• Rekombinante Proteine

• Enzyme

• Zytokine

• Wachstumsfaktoren

• Rezeptoren

• L Ektine

• Fusionsproteine

• Bindende Proteine

Biotinylierte Peptide

Mögliche Einsatzmöglichkeiten sind:

• Epitopkartierung

• Antikörper-Screening

• Rezeptorbindungsstudien

• Enzymforschung

• Drogenscreening-Assays

• Studien zur Proteininteraktion

Ein geeigneter Spacer zwischen Peptid und Biotin kann die Zugänglichkeit verbessern.

Biotinylierte Nukleinsäuren

Zu den kompatiblen Formaten können gehören:

• Einzelsträngig DNA

• Doppelsträngig DNA

• RNA

• Oligonukleotidsonden

• PCR Amplifikate

• Aptamere

• Modifizierte Nukleinsäuresonden

• Capture-Sequenzen

Biotinylierte kleine Moleküle

Kleine biotinylierte Verbindungen können angehängt werden, wenn ihre Biotingruppe für die Streptavidin-Oberfläche zugänglich bleibt.

Bei der Entwicklung des Assays sollten die Länge des Spacers und die molekulare Ausrichtung berücksichtigt werden.

Empfohlenes Ladeprotokoll für biotinylierten L -Igand L

Das folgende Verfahren ist ein allgemeiner Ausgangspunkt. Die Endbedingungen sollten für das tatsächliche Biomolekül und die Anwendung optimiert werden.

1. SA PS 5UM-10 resuspendieren

Lassen Sie die Suspension die empfohlene Verarbeitungstemperatur erreichen.

Durch vorsichtiges Umdrehen, Drehen oder kontrolliertes Vortexen mischen, bis eine homogene Masse entsteht.

Da sich während der Lagerung 5 µm Partikel absetzen können, mischen Sie die Suspension vor jedem Probenahmeschritt.

Vermeiden Sie übermäßige Schaumbildung.

2. Berechnen Sie die erforderliche Mikrosphärenmenge

Bestimmen Sie die benötigte Menge gemäß:

• Anzahl der Tests

• Mikrosphärenmenge pro Test

• Erforderliche Anzahl von Durchflusszytometrie-Ereignissen

• Erwartete Zielkonzentration

• Testvolumen

• L ot-spezifische Bindungskapazität

• Anzahl der Waschschritte

• Erwarteter Verarbeitungsverlust

Schätzen Sie die Ligandenbeladung nicht allein anhand des Feststoffgehalts ab.

3. Übertragen Sie das Mikrosphären

Übertragen Sie die benötigte Menge in ein sauberes, wenig bindendes Röhrchen oder Verarbeitungsgefäß.

Verwenden Sie saubere Pipettenspitzen und vermeiden Sie eine Kontamination des Originalbehälters.

4. Waschen Sie das Partikel

Waschen Sie die Mikrosphären mit einem Puffer, der mit Streptavidin und dem ausgewählten biotinylierten Liganden kompatibel ist.

Vermeiden Sie Puffer, die freies Biotin enthalten, während der Ligandenbeladung.

Zu den möglichen Wiederherstellungsmethoden gehören:

• Zentrifugation

• Membranfiltration

• Tangentialflussfiltration

• Andere validierte Fest-Flüssig-Trennmethoden

Geeignete Bedingungen sollten experimentell ermittelt werden.

5. Bereiten Sie den biotinylierten L Igand vor

Verdünnen Sie den biotinylierten Antikörper, das Protein, das Peptid oder die Nukleinsäure im ausgewählten Bindungspuffer.

Rezension:

• L Ligandkonzentration

• Biotinylierungsgrad

• Molekulare Reinheit

• Aggregatebene

• Kostenloser Biotingehalt

• Pufferzusätze

• Proteinstabilität

• Nukleinsäurestabilität

6. Fügen Sie den Igand L hinzu

Kombinieren Sie die gewaschenen Mikrokügelchen mit dem biotinylierten Liganden.

Sorgen Sie für ein sanftes Mischen, damit die Partikel gleichmäßig suspendiert bleiben.

Vermeiden Sie Mischbedingungen, die zu übermäßigem Schaum, Partikelaggregation oder Denaturierung von Biomolekülen führen.

7. Optimieren Sie die Ladung L igand L

Auswerten:

• Mikrosphärenkonzentration

• L Ligandkonzentration

• L Igand-zu-Partikel-Verhältnis

• Inkubationszeit

• Inkubationstemperatur

• Puffer-pH

• Salzkonzentration

• Mischgeschwindigkeit

• Reaktionsvolumen

Eine maximale Ligandenbeladung sorgt nicht immer für die beste Testleistung.

Eine übermäßige Oberflächenbeladung kann die sterische Überfüllung erhöhen und die Zugänglichkeit des Ziels verringern.

8. Entfernen Sie den ungebundenen L -Igand

Trennen und waschen Sie die Partikel, um ungebundene biotinylierte Moleküle zu entfernen.

Unzureichendes Waschen kann den Hintergrund erhöhen, während übermäßiges Waschen die Rückgewinnung der Mikrokügelchen verringern kann.

9. Blockiere das Mikrosphären

Inkubieren Sie die ligandenbeladenen Partikel mit einem anwendungskompatiblen Blockierungsreagenz.

Mögliche Blocker sind:

• Rinderserumalbumin

• Kasein

• Fischgelatine

• Nichtimmunes Immunglobulin

• Synthetische Blockpolymere

• Kommerzielle Mikrosphären-blockierende Puffer

Die Blockierungsleistung sollte anhand positiver und negativer Proben bewertet werden.

10. Resuspendieren Sie das vorbereitete Mikrosphären

Resuspendieren Sie die beschichteten und blockierten Partikel in einem geeigneten Test- oder Lagerpuffer.

Auswerten:

• Partikel Streuung

• L Ligandenretention

• Bindungsaktivität

• Unspezifische Bindung

• Partikel Wiederherstellung

• Kurzfristige Stabilität

• L Langzeitstabilität

• Mikrobielle Stabilität

Workflow für den Durchflusszytometrie-Bead-Assay

1. Bereiten Sie die Erfassung vor Mikrosphären

L oad SA PS 5UM-10 mit dem ausgewählten biotinylierten Fängermolekül.

Waschen und blockieren Sie die Partikel, bevor Sie Proben testen.

2. Bereiten Sie die Kontrollen vor

Zu den empfohlenen Kontrollen können gehören:

• Erfassungspuffer leer

• Streptavidin-Mikrosphären ohne Fängerliganden

• L Igand-beladene Mikrosphären ohne Probe

• Negative Probe

• Positive Probe

• Kontrolle nur für Reporter

• Isotypkontrolle

• Nicht relevante biotinylierte Ligandenkontrolle

• Einfarbige Steuerelemente für mehrfarbige Experimente

3. Fügen Sie die Probe hinzu

Kombinieren Sie die vorbereiteten Mikrokügelchen mit der Testprobe.

Optimieren:

• Probenvolumen

• Probenverdünnung

• Mikrosphärenkonzentration

• Zielkonzentrationsbereich

• Inkubationszeit

• Inkubationstemperatur

• Mischmethode

• Beispielmatrix

4. Waschen Sie das Mikrosphären

Entfernen Sie ungebundene Probenbestandteile und sorgen Sie dabei für eine akzeptable Mikrosphärenrückgewinnung.

Notieren Sie während der Methodenentwicklung Anzahl, Volumen und Zusammensetzung der Waschschritte.

5. Fügen Sie den Fluorescent Reporter hinzu

Fügen Sie einen fluoreszierenden Nachweisantikörper, einen sekundären Antikörper, eine Sonde oder einen anderen Reporter hinzu.

Das ausgewählte Fluorophor muss mit der Laser- und Detektorkonfiguration des vorgesehenen Durchflusszytometers kompatibel sein.

6. Inkubieren und waschen

Optimieren Sie die Reporterkonzentration und die Inkubationszeit.

Entfernen Sie ungebundenen Reporter, um die Hintergrundfluoreszenz zu reduzieren.

7. Zur Übernahme erneut suspendieren

Resuspendieren Sie die endgültigen Partikel in einem sauberen Erfassungspuffer mit geringem Hintergrund.

Unmittelbar vor der Durchflusszytometrie-Untersuchung mischen.

8. Daten erfassen

Sammeln Sie genügend Mikrosphärenereignisse, um die beabsichtigte Analyse zu unterstützen.

Mögliche analytische Ergebnisse sind:

• Mittlere Fluoreszenzintensität

• Mittlere Fluoreszenzintensität

• Prozentsatz positiver Mikrosphären

• Signal-Hintergrund-Verhältnis

• Dosis-Wirkungs-Kurve

• Assay-Präzision

• Erholung

• Spezifität

• Kreuzreaktivität

• Forschung zu Nachweisgrenzen

9. Analysieren Sie die Ergebnisse

Legen Sie mithilfe geeigneter Kontrollen positive und negative Bereiche fest.

Definieren Sie den positiven Schwellenwert nicht allein anhand der Testprobe.

Erkennung und Gating von 5 µm Mikrosphären

Forward-Scatter- und Side-Scatter-Gating

Die 5 µm Mikrosphärenpopulation kann mithilfe von Vorwärtsstreu- und Seitenstreudiagrammen auf vielen herkömmlichen Durchflusszytometern ausgewertet werden.

Ein vorläufiges FSC-versus-SSC-Gate kann dabei helfen, Folgendes auszuschließen:

• Elektronisches Rauschen

• Kleine Trümmer

• Pufferpartikel

• L arge Aggregate

• Unregelmäßige Ereignisse

Die gemessene Streuposition hängt von der Partikelmatrix, dem Brechungsindex, der Instrumentenoptik, den Detektoreinstellungen und dem Design der Durchflusszelle ab.

Reporter-Fluoreszenz-Detektion

Wenn SA PS 5UM-10 keinen internen Fluoreszenzfarbstoff enthält, kann die Partikelpopulation dennoch durch Streuung und die Fluoreszenz eines gebundenen Reporters analysiert werden.

Nützliche Grundstücke können sein:

• FSC versus SSC

• FSC versus Reporterfluoreszenz

• SSC versus Reporterfluoreszenz

• Reporter-Fluoreszenzhistogramm

• Streufläche versus Höhe

• Streufläche versus Breite

Singulett- und Aggregatanalyse

Aggregate können eine höhere Streuung, Fluoreszenz oder Signalbreite erzeugen als einzelne Partikel.

Parameter für Pulsfläche, -höhe und -breite können dabei helfen, einzelne Partikel von Dubletts und größeren Aggregaten zu unterscheiden.

Auslöserauswahl

Mögliche Auslöser für eine Akquise sind:

• Vorwärtsstreuung

• Seitliche Streuung

• Reporterfluoreszenz

• Interne Partikelfluoreszenz, sofern verfügbar

• Kombinierte Gating-Strategien

Partikel Konzentration

Testen Sie während der anfänglichen Methodenentwicklung eine Verdünnungsreihe.

Übermäßig konzentrierte Mikrokügelchen können zu gleichzeitigen Ereignissen führen, bei denen mehrere Partikel als ein Ereignis gemessen werden.

Mögliche Indikationen sind:

• Konzentrationsabhängige Signalverschiebungen

• Erhöhte scheinbare Fluoreszenz

• Erhöhte Streuung

• Breite Verbreitung

• Unerwartete Dublettpopulationen

• Instabile Ereignisraten

Empfohlene Methodenaufzeichnungen

Aufzeichnen:

• Durchflusszytometer-Modell

• L Aser-Konfiguration

• Detektorfilter

• Detektorspannung oder -verstärkung

• Scatter-Einstellungen

• Triggerkanal

• Triggerschwelle

• Probenflussrate

• Mikrosphärenverdünnung

• Pufferzusammensetzung

• Erfassungszeit

• Anzahl der gesammelten Ereignisse

• Analysetore

• Produktchargennummer

Blockierung und unspezifische Bindungskontrolle

Eine unspezifische Adsorption kann die Fluoreszenz negativer Proben erhöhen und die Testempfindlichkeit verringern.

Mögliche Ursachen sind:

• Unzureichende Blockierung

• Inkompatibles Blockierungsreagenz

• Überschüssiger Fängerligand

• Überschüssiger fluoreszierender Reporter

• Unzureichendes Waschen

• Aggregierte Antikörper

• Hydrophobe Probenbestandteile

• Hohe Probenproteinkonzentration

• Mikrosphärenaggregation

• Matrixinterferenz

Screening mehrerer Blockierungsreagenzien

Vergleichen Sie mehrere blockierende Formulierungen.

Der bevorzugte Blocker sollte die Fluoreszenz der negativen Probe reduzieren und gleichzeitig das Signal der positiven Probe aufrechterhalten.

Optimieren Sie die Ladung L igand L

Mehr Fängerligand ist nicht immer besser.

Eine übermäßige Ligandenbeladung kann:

• Erhöhen Sie den Reagenzienverbrauch

• Verursacht sterische Überfüllung

• Reduzieren Sie die Zugänglichkeit des Ziels

• Erhöhen Sie unspezifische Interaktionen

• Erweitern Sie die Assay-Variabilität

Titrieren Sie den Reporter

Überschüssiger fluoreszierender Reporter kann den Hintergrund erhöhen.

Testen Sie mehrere Reporterkonzentrationen mithilfe von Positiv- und Negativkontrollen.

Optimieren Sie das Waschen

Auswerten:

• Anzahl der Waschschritte

• Waschpufferzusammensetzung

• Waschvolumen

• Mischmethode

• Trennmethode

• Restvolumen des Überstandes

• Wiederherstellung der Mikrosphären

Bewerten Sie Reinigungsmittel sorgfältig

Eine kleine Menge eines kompatiblen Reinigungsmittels kann die Dispersion verbessern und unspezifische Adsorption verringern.

Überschüssiges Waschmittel kann die Wechselwirkungen zwischen Biomolekülen oder die Bindung von Reportern beeinträchtigen.

Vermeiden Sie freies Biotin

Freies Biotin in Puffern, Nahrungsergänzungsmitteln, Proben oder Blockierungsreagenzien kann Streptavidin-Bindungsstellen besetzen und die Ligandenbeladung verringern.

Vergleich von 5 µm , 3 µm und 1 µm Streptavidin-Mikrosphären

Wählen Sie SA PS 5UM-10, wenn:

• Eine gute Streusichtbarkeit ist wichtig.

• Es wird ein herkömmliches Durchflusszytometer verwendet.

• Es ist eine klare Partikelansteuerung erforderlich.

• Eine einfachere Trennung von kleinen Rückständen wird bevorzugt.

• Die Handhabung mikrometergroßer Perlen ist erwünscht.

• Es kommt eine Zentrifugalrückgewinnung zum Einsatz.

• Eine Partikelplattform im Zellgrößenbereich ist nützlich.

• Derzeit werden routinemäßige, auf Kügelchen basierende Durchflusstests entwickelt.

Wählen Sie SA PS 3UM-10, wenn:

• Bevorzugt werden Partikel mit einer kleineren Mikrometergröße.

• Es ist ein Gleichgewicht zwischen Partikelanzahl und Streuerkennung erforderlich.

• L geringere Sedimentation als 5 µm Partikel ist wünschenswert.

• Eine routinemäßige durchflusszytometrische Erkennung ist weiterhin erforderlich.

Wählen Sie SA PS 1UM-10, wenn:

• Eine höhere Partikelzahl pro Masseneinheit wird bevorzugt.

• Es werden kleinere Reaktionsvolumina verwendet.

• L Ein geringeres Absetzverhalten ist wichtig.

• Das Instrument kann 1 µm Partikel zuverlässig erkennen.

• Eine größere kollektive Oberfläche pro Masseneinheit kann von Vorteil sein.

Die endgültige Auswahl der Partikelgröße sollte auf der Testleistung und nicht nur auf dem Durchmesser basieren.

Qualitätskontrolle und Chargenkonsistenz

Zu den möglichen Qualitätskontrollparametern für SA PS 5UM-10 gehören:

• Mittlerer Partikeldurchmesser

• Partikel -Größenverteilung

• Partikel -Größenvariationskoeffizient

• Aussehen der Federung

• Feststoffgehalt

• Konsistenz der Streptavidin-Beschichtung

• Biotin-Bindungskapazität

• Partikel Streuung

• Aggregatebene

• Partikel Wiederherstellung

• Hintergrundfluoreszenz

• Unspezifische Bindung

• Mikrobielle Kontrolle

• Verpackungsintegrität

• Lagerstabilität

• L Gesamtkonsistenz

Partikel -Größentest

Partikel -Größencharakterisierung kann Folgendes melden:

• Mittlerer Durchmesser

• Mittlerer Durchmesser

• Größenbereich

• Größenverteilung

• Variationskoeffizient

• Mikroskopie oder instrumentelle Charakterisierung

Bei der Ergebnisberichterstattung ist die Messmethode anzugeben.

Biotin-Bindungskapazität

Die Bindungskapazität sollte mit einer definierten biotinylierten Sonde bestimmt werden.

Das Messergebnis ist abhängig von:

• Sondentyp

• Molekülgröße der Sonde

• Anzahl der Biotingruppen

• Reinheit der Sonde

• Inkubationsbedingungen

• Pufferzusammensetzung

• Erkennungsmethode

• Berechnungsgrundlage

Mit unterschiedlichen Testsonden oder -methoden ermittelte Werte sind möglicherweise nicht direkt vergleichbar.

Qualitätskontrolle der Durchflusszytometrie

Ein durchflusszytometrisches QC-Verfahren kann Folgendes bewerten:

• Hauptposition der Partikelpopulation

• Prozentsatz der verschlossenen Mikrokügelchen

• Reporterfluoreszenz nach Laden einer Standardsonde

• Breite der Fluoreszenzverteilung

• Hintergrundtrennung

• Wiederholbarkeit

• Gesamtbevölkerung

Verwenden Sie beim Vergleich von Produktionschargen einheitliche Geräteeinstellungen.

L ot-spezifische Dokumentation

Zu den verfügbaren Unterlagen können gehören:

• Analysezertifikat

• Produktspezifikation

• Partikel -Größenergebnisse

• Ergebnisse zum Feststoffgehalt

• Ergebnisse zur Bindungskapazität

• Sicherheitsdatenblatt

• Handhabungshinweise

• Lagerungsempfehlungen

• L oder Nummer

• Produktionsdatum

Erforderliche Tests und Abnahmekriterien sollten vor der Massenfertigung vereinbart werden.

Massenfertigung und kundenspezifische Anpassung

Shanghai SanYu Biotechnology Co., L td. liefert SHBC Streptavidin-Mikrokügelchen für Laborforschung, Pilotentwicklung, wiederholte Produktion und den Großeinkauf.

Auswertung von Forschungsproben

Proben können ausgewertet werden auf:

• Durchflusszytometrie-Erkennung

• Partikel Streuung

• Streptavidin-Aktivität

• Beladung mit biotinyliertem Liganden

• Unspezifische Bindung

• Partikel Wiederherstellung

• Machbarkeit des Tests

• Instrumentenkompatibilität

Entwicklung im Pilotmaßstab

Pilotchargen können Folgendes unterstützen:

• Assay-Optimierung

• Überprüfung der Bindungskapazität

• Stabilitätsstudien

• Pufferauswahl

• Verpackungsbewertung

• Entwicklung der Qualitätskontrolle

• Kundenüberprüfung

• Prozessübertragung

Massenproduktion

Nach Bestätigung der technischen Anforderungen und Freigabespezifikationen kann eine Massenfertigung arrangiert werden.

Bitte geben Sie Folgendes an:

• Benötigte Menge

• Erwarteter Jahresbedarf

• Bevorzugte Packungsgröße

• Verwendungszweck

• Erforderlicher Partikeldurchmesser

• Erforderlicher Feststoffgehalt

• Erforderliche Bindungskapazität

• Biotinylierter Ligandentyp

• Pufferanforderungen

• Konservierungsbeschränkungen

• Anforderungen an die Qualitätskontrolle

• Dokumentationsanforderungen

• Lieferplan

• Lieferziel

Benutzerdefinierter Partikel Durchmesser

Alternative Partikelgrößen können je nach Anwendung und technischer Machbarkeit diskutiert werden.

Benutzerdefinierte Streptavidin L -Beladung

Projektspezifische Streptavidin-Beschichtungsniveaus oder Bindungskapazitätsziele können bewertet werden.

Benutzerdefinierte Fluoreszenzkodierung

Intern fluoreszierende oder kodierte Streptavidin-Mikrokügelchen können für Multiplex-Durchflusszytometrie-Projekte diskutiert werden.

Mögliche Optionen können sein:

• Alternative Anregungswellenlängen

• Alternative Emissionswellenlängen

• Verschiedene Fluoreszenzfarben

• Mehrere Fluoreszenzintensitätsstufen

• Kundenspezifische Partikelcodes

Benutzerdefinierter Puffer und Konzentration

Alternative Feststoffkonzentrationen, Pufferformulierungen, Konservierungssysteme und Verpackungsformate können evaluiert werden.

OEM und Private L abel Supply

Kooperationsformate können sein:

• OEM Verpackung

• Kundenspezifische Etiketten

• Private-Label-Lieferung

• Kundenspezifische Katalognummern

• Massenlieferung von Rohstoffen

• Anpassung technischer Dokumente

Empfehlungen zur Handhabung und Lagerung

Befolgen Sie das endgültige Produktetikett, das technische Datenblatt und das chargenspezifische Analysezertifikat.

Zu den allgemeinen Empfehlungen gehören:

• Unter den angegebenen Kühlbedingungen lagern.

• Nicht einfrieren, es sei denn, die Gefrier-Tau-Stabilität wurde bestätigt.

• Halten Sie den Behälter fest verschlossen.

• Lagern Sie das Fläschchen aufrecht.

• Vor der Probenahme gründlich mischen.

• Verwenden Sie saubere Pipettenspitzen und Röhrchen mit geringer Bindung.

• Vermeiden Sie eine Kontamination der Originalsuspension.

• Lassen Sie die Mikrokügelchen nicht trocknen.

• Vermeiden Sie wiederholte unnötige Temperaturänderungen.

• Verdünntes Material nicht in den Originalbehälter zurückgeben.

• Notieren Sie die Chargennummer und das Öffnungsdatum des Produkts.

Resuspension

Da sich 5 µm -Partikel während der Lagerung absetzen können:

1. Lassen Sie die Durchstechflasche die empfohlene Handhabungstemperatur erreichen.

2. Drehen Sie das Fläschchen vorsichtig um oder drehen Sie es.

3. Bei Bedarf kontrolliert vortexen.

4. Stellen Sie sicher, dass die Suspension homogen ist.

5. Auf irreversible Aggregate prüfen.

Vermeiden Sie Einfrieren

Einfrieren kann Folgendes verursachen:

• Partikel Aggregation

• Reduzierte Streptavidin-Aktivität

• Änderungen der Federungsstabilität

• Reduzierte Partikelrückgewinnung

• Erhöhter Testhintergrund

Trocknen vermeiden

Lassen Sie das Mikrosphärenpellet während des Waschens nicht trocknen.

Das Trocknen kann zu irreversibler Aggregation und verminderter Funktionsleistung führen.

Schützen Sie sich vor freiem Biotin

Vermeiden Sie freies Biotin während der Immobilisierung biotinylierter Liganden.

Bewerten Sie die Stabilität der vorbereiteten Reagenzien

L Igand-beladene und blockierte Mikrosphären können eine andere Stabilität als die ursprüngliche SA PS 5UM-10-Suspension aufweisen.

Bewerten Sie das vorbereitete Reagenz unter den vorgesehenen Lager-, Transport- und Betriebsbedingungen.

Häufig gestellte Fragen

Was ist SA PS 5UM-10?

SA PS 5UM-10 ist eine mit 5 µm Streptavidin beschichtete Mikrokügelchensuspension mit 1 % Feststoffgehalt zum Einfangen biotinylierter Biomoleküle in der Durchflusszytometrie und Bead-basierten Assay-Forschung.

Was ist die Marke SHBC ?

SHBC ist die Marke für Mikrosphären und biotechnologische Materialien von Shanghai SanYu Biotechnology Co., L td.

Was ist der nominale Partikeldurchmesser?

Der nominelle Partikeldurchmesser beträgt 5 µm .

Der tatsächlich gemessene Durchmesser und die Partikelgrößenverteilung sollten anhand einer chargenspezifischen Dokumentation bestätigt werden.

Wie hoch ist der Feststoffgehalt?

SA PS 5UM-10 wird mit 1 % Feststoffgehalt geliefert.

Sind SA PS 5UM-10 Mikrokügelchen magnetisch?

Es sollte nicht davon ausgegangen werden, dass das Produkt magnetisch ist, es sei denn, die magnetischen Eigenschaften sind in der technischen Spezifikation ausdrücklich angegeben.

Wählen Sie für die magnetische Trennung ein Produkt aus, das speziell als Streptavidin-Magnetkügelchen beschrieben wird.

Sind die Mikrokügelchen fluoreszierend?

Es sollte nicht davon ausgegangen werden, dass das Standardprodukt einen internen Fluoreszenzfarbstoff enthält, es sei denn, Fluoreszenz ist in der Produktspezifikation ausdrücklich aufgeführt.

Die durchflusszytometrische Erkennung kann Streuung oder Fluoreszenz eines gebundenen Reporters nutzen.

Welche Moleküle können an SA PS 5UM-10 binden?

Die Streptavidin-Oberfläche kann biotinylierte Antikörper, Antigene, Proteine, Peptide, Oligonukleotide, DNA , RNA , Aptamere und andere biotinhaltige Moleküle einfangen.

Kann ein u nm odifizierter Antikörper direkt binden?

Ein u nm modifizierter Antikörper bindet nicht spezifisch über die Streptavidin-Biotin-Wechselwirkung, es sei denn, er ist biotinyliert oder über ein anderes kompatibles Reagenz gebunden.

Ist die Aktivierung EDC/NHS erforderlich?

EDC/NHS Aktivierung ist normalerweise nicht erforderlich, wenn ein biotinyliertes Molekül auf Streptavidin-beschichtete Mikrokügelchen geladen wird.

Wie groß ist die Biotin-Bindungskapazität?

Die Bindungsfähigkeit sollte anhand der Produktspezifikation oder des chargenspezifischen Analysezertifikats bestätigt werden.

Sie sollte nicht allein aus dem Feststoffgehalt berechnet werden.

Kann SA PS 5UM-10 in der Durchflusszytometrie verwendet werden?

Ja. Der Partikeldurchmesser von 5 µm eignet sich für die Auswertung in Durchflusszytometrie-Bead-Assays und partikelbasierter Forschung.

Kann ein herkömmliches Durchflusszytometer 5 µm Mikrokügelchen erkennen?

Viele herkömmliche Durchflusszytometer können mit geeigneten Streueinstellungen 5 µm Mikrokügelchen erkennen.

Die tatsächliche Leistung hängt von der Instrumentenoptik, den Lasern, den Detektoren, den Triggereinstellungen und dem Probenpuffer ab.

Kann SA PS 5UM-10 für Sandwich-Immunoassays verwendet werden?

Ja. Ein biotinylierter Fängerantikörper kann auf dem Partikel immobilisiert werden, gefolgt von der Zielerfassung und Detektion mit einem fluoreszierenden Reporterantikörper.

Kann es zum Nachweis von Nukleinsäuren verwendet werden?

Ja. Biotinylierte Oligonukleotide, DNA , RNA , PCR Produkte und Aptamere können auf Immobilisierung und Zielerfassung untersucht werden.

Kann SA PS 5UM-10 in Multiplex-Assays verwendet werden?

Ja, vorausgesetzt, dass die SA PS 5UM-10-Population von den anderen Mikrosphärenpopulationen unterschieden werden kann.

Möglicherweise ist eine individuelle Fluoreszenzkodierung erforderlich.

Wie sollten die Mikrosphären gewaschen werden?

Die Waschmethode hängt von der Partikelzusammensetzung, der Dichte, dem Puffer, dem Volumen und der erforderlichen Rückgewinnung ab.

Zentrifugation oder membranbasierte Methoden können evaluiert werden.

Warum ist die Mikrosphärenrückgewinnung gering?

Mögliche Ursachen sind:

• Unzureichende Zentrifugalkraft

• Kurze Zentrifugationszeit

• L oss während der Überstandsentfernung

• Haftung an der Rohroberfläche

• Inkompatible Trennmethode

• Partikel Aggregation

• Übermäßiges Waschen

Wie kann unspezifische Bindung reduziert werden?

Optimieren Sie das Blockierungsreagenz, die Ligandenkonzentration, die Reporterkonzentration, die Waschbedingungen, den Waschmittelgehalt, die Probenverdünnung und die Inkubationszeit.

Können Puffer mit freiem Biotin verwendet werden?

Freies Biotin kann Streptavidin-Bindungsstellen besetzen und sollte während der Ligandenbeladung generell vermieden werden.

Warum setzen sich die Partikel ab?

Aufgrund ihrer Größe und Dichte können sich mikrometergroße Partikel absetzen.

Mischen Sie die Suspension vor jedem Probenahmeschritt gründlich.

Sollte SA PS 5UM-10 vor der Durchflusszytometrie verdünnt werden?

Ja. Bereiten Sie eine Arbeitsverdünnung entsprechend der erforderlichen Partikelanzahl und Ereignisrate vor.

Während der Methodenentwicklung wird eine Verdünnungsreihe empfohlen.

Können die Mikrosphären eingefroren werden?

Das Einfrieren wird im Allgemeinen nicht empfohlen, es sei denn, die Gefrier-Tau-Stabilität wurde ausdrücklich validiert.

Kann die Konzentration individuell angepasst werden?

Alternative Feststoffkonzentrationen können je nach Projektanforderungen und Herstellungsmöglichkeit besprochen werden.

Kann die Bindungskapazität individuell angepasst werden?

Projektspezifische Streptavidin-Beladungs- oder Bindungskapazitätsziele können evaluiert werden.

Können fluoreszierende Streptavidin-Mikrosphären hergestellt werden?

Fluoreszierende oder kodierte Streptavidin-Mikrokügelchen können für qualifizierte Multiplex-Durchflusszytometrie-Projekte diskutiert werden.

Ist eine Massenproduktion möglich?

Ja. Shanghai SanYu Biotechnology Co., L td. unterstützt Muster, Pilotchargen, wiederholte Bestellungen, OEM Projekte und Massenfertigung.

Welche Informationen werden für ein Angebot benötigt?

Bitte geben Sie Folgendes an:

• Katalognummer SA PS 5UM-10

• Benötigte Menge

• Erwartetes jährliches Einkaufsvolumen

• Bevorzugte Packungsgröße

• Verwendungszweck

• Durchflusszytometer-Modell

• Art des biotinylierten Liganden

• Erforderliche Bindungskapazität

• Erforderliche Mikrosphärenmenge pro Test

• Pufferbeschränkungen

• Konservierungsbeschränkungen

• Anforderungen an die Qualitätskontrolle

• Dokumentationsanforderungen

• Lieferziel

Fordern Sie ein Muster- oder Massenangebot an

SHBC SA PS 5UM-10 5 µm Streptavidin-Mikrosphären bieten eine flexible Partikelplattform zur Immobilisierung biotinylierter Antikörper, Proteine, Peptide, Oligonukleotide, DNA , RNA , Aptamere und andere Biotin-markierte Biomoleküle.

Das Produkt ist geeignet für:

• Durchflusszytometrie-Bead-Assays

• Bead-basierte Sandwich-Immunoassays

• Kompetitive Bindungstests

• Immobilisierung biotinylierter Antikörper

• Proteininteraktionsforschung

• Einfangen von Nukleinsäuren

• Hybridisierungstests

• Affinitätsbindungsstudien

• Entwicklung der Multiplex-Durchflusszytometrie

• Herstellung von Forschungsreagenzien

SA PS 5UM-10 bietet:

• 5 µm nominaler Partikeldurchmesser

• Streptavidin-funktionale Oberfläche

• 1 % Feststoffsuspension

• Kompatibilität mit biotinylierten Biomolekülen

• Lieferung von Muster- und Pilotchargen

• Fähigkeit zur Massenfertigung

• OEM und kundenspezifische Entwicklungsunterstützung

Geben Sie für die Probenbewertung oder den Großeinkauf die beabsichtigte Anwendung, die erforderliche Menge, den biotinylierten Liganden, die gewünschte Bindungskapazität, die Konfiguration des Durchflusszytometers, die Verpackungsanforderungen und die Qualitätskontrollspezifikationen an.

Produktname: 5 µm Streptavidin-Mikrosphären
Katalognummer: SA PS 5UM-10
Marke: SHBC
Hersteller: Shanghai SanYu Biotechnology Co., L td.
Nomineller Partikel -Durchmesser: 5 µm
Oberflächenmodifikation: Streptavidin
Feststoffgehalt: 1 %
Hauptanwendung: Durchflusszytometrie und Bead-Assay-Forschung
Lieferfähigkeit: Proben, Pilotchargen und Massenproduktion
Vorgesehene Verwendung: Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke.