
Produits
SHBC fournit des microsphères colorées, des microsphères fluorescentes, des billes magnétiques, des microsphères de silice, des microsphères d'emballage pour chromatographie et des réactifs biologiques pour le développement de tests de diagnostic, l'extraction d'acides nucléiques, la purification et les applications de séparation des protéines.
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AMS200-10
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SHBC
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5%
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200 nm
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10 ml, 20 ml, 50 ml, 500 ml, 1000 ml
Perles magnétiques en silice 200 nm AMS200-10
L'AMS200-10 est une suspension de billes magnétiques recouvertes de silice de 200 nm et fournie à 5 % de solides.
Lorsque la teneur en matières solides est exprimée en poids par volume, 5 % correspond à environ 50 mg de matériau de billes magnétiques par millilitre. La base de concentration doit être confirmée dans la fiche technique du produit applicable.
La surface de silice fournit une plate-forme chimiquement adaptable pour la silanisation ultérieure, la fonctionnalisation de surface et l'immobilisation de biomolécules.
L'AMS200-10 peut être évalué comme matériau de base magnétique pour le développement de particules fonctionnalisées par des anticorps, d'essais immunologiques magnétiques, de capture de biomolécules, de prétraitement d'échantillons, de séparation par affinité et d'applications connexes en sciences de la vie.
Si l'AMS200-10 est fourni avec une surface en silice native ou en Si-OH, une modification supplémentaire de la surface est généralement nécessaire avant l'immobilisation covalente stable des anticorps, des antigènes, des protéines ou des oligonucléotides.
Les dérivés fonctionnalisés potentiels comprennent les particules magnétiques amino, carboxyle, époxy, aldéhyde, tosyle, activées par NHS et enrobées de streptavidine.
L'AMS200-10 est destiné aux entreprises de biotechnologie, aux développeurs de tests immunologiques, aux instituts de recherche et aux fabricants de réactifs qui ont besoin d'une matière première concentrée en billes magnétiques de silice de 200 nm pour l'évaluation de faisabilité, le développement de la chimie de surface, la production pilote et la fabrication en vrac.
Le produit est fourni comme matière première de recherche et de développement de réactifs. Il n’est pas fourni sous forme de réactif de diagnostic fini.
Présentation du produit
Les billes magnétiques recouvertes de silice combinent une particule magnétiquement réactive avec une surface externe en silice.
Le composant magnétique permet la récupération des particules sous un champ magnétique externe, tandis que la surface en silice fournit des groupes silanol qui peuvent être utilisés comme point de départ pour une fonctionnalisation chimique supplémentaire.
Des nanoparticules magnétiques commerciales de silice exacte de 200 nm sont disponibles avec des surfaces d'hydroxyle natif et des concentrations allant jusqu'à 50 mg/mL. Des produits associés sont également disponibles avec des groupes carboxyle, amino, tosyle et autres groupes fonctionnels pour la conjugaison de biomolécules.
L'AMS200-10 peut être évalué pour :
Fonctionnalisation de surface de silice ;
Immobilisation d'anticorps après modification de surface ;
Immobilisation d'antigènes et de protéines ;
Développement de supports pour tests immunologiques magnétiques ;
Recherche sur les dosages immunologiques en sandwich magnétique ;
Recherche compétitive sur les tests immunologiques ;
Prétraitement des échantillons ;
Enrichissement en biomolécules ;
Séparation par affinité ;
Immobilisation de la sonde d'acide nucléique ;
Développement de biocapteurs ;
Développement de réactifs à l’échelle pilote ;
Fabrication par lots.
La chimie de surface finale et la voie de couplage doivent être sélectionnées en fonction du ligand, du format de test, de la matrice de l'échantillon et de la stabilité de stockage requise.
Spécifications du produit AMS200-10
Article | Spécification |
|---|---|
Nom du produit | Perles magnétiques en silice 200 nm |
Numéro de catalogue | AMS200-10 |
Taille nominale des particules | 200 nm |
Matériau de surface | Silice |
Groupe de surfaces natif | Surface Si–OH et hydroxyle, sous réserve de confirmation TDS |
Teneur en solides | 5% |
Concentration approximative | 50 mg/mL lorsque 5 % est exprimé en p/v |
Formulaire de produit | Suspension à billes magnétiques |
Utilisation principale | Fonctionnalisation de surface et développement de supports magnétiques |
Utilisation des tests immunologiques | Immobilisation d'anticorps ou d'antigène après modification de surface validée |
Étape de développement | Recherche, développement de procédés, production pilote et fabrication par lots |
Options d'approvisionnement | Quantités d’évaluation, quantités pilotes et approvisionnement en gros |
Personnalisation | Sous réserve d'évaluation technique |
Utilisation prévue | Matière première de recherche et de développement de réactifs |
Les paramètres spécifiques au produit suivants doivent être confirmés via la fiche technique applicable et le CoA spécifique au lot :
Diamètre moyen des particules ;
Distribution granulométrique ;
Indice de polydispersité ;
Morphologie des particules ;
Structure en coque de silice ;
Composition du noyau magnétique ;
Contenu en matériau magnétique ;
Magnétisation à saturation ;
Temps de collecte magnétique ;
Teneur en solides ;
Densité superficielle des silanols ;
Milieu de suspension ;
Teneur en tensioactifs ;
Système de conservation ;
Température de stockage ;
Durée de conservation ;
Spécifications de libération des lots.
Les spécifications publiées des concurrents ne doivent être utilisées qu’à des fins d’analyse comparative. Elles ne doivent pas être présentées comme des données de performances de l'AMS200-10.
Que sont les billes magnétiques recouvertes de silice ?
Les billes magnétiques recouvertes de silice sont des particules magnétiques dotées d'une couche externe contenant de la silice ou un matériau à base de silice.
La couche de silice peut apporter :
Une surface inorganique hydrophile ;
Groupes silanols de surface ;
Stabilité chimique dans de nombreuses formulations aqueuses ;
Une plateforme de modification de surface à base de silane ;
Une barrière entre le matériau magnétique et la solution environnante ;
Une base pour introduire des groupes de couplage fonctionnels.
Des nanoparticules magnétiques recouvertes de silice Exact-200 nm sont proposées dans le commerce avec des surfaces hydroxyles pour la fonctionnalisation chimique et la séparation des biomolécules. Des billes magnétiques de silice fonctionnalisées de 200 nm sont également disponibles avec des groupes carboxyle, amino et tosyle pour la conjugaison de protéines, d'anticorps et d'oligonucléotides.
La silice native et la silice fonctionnalisée ne doivent pas être traitées comme la même surface de couplage.
Une surface de silice native peut nécessiter une silanisation ou une autre étape de modification avant la fixation covalente d'un ligand biologique.
Principales caractéristiques de l'AMS200-10
Taille de particule définie de 200 nm
L'AMS200-10 fournit un format de particules magnétiques submicroniques d'un diamètre nominal de 200 nm.
Par rapport aux particules de taille micrométrique plus grande et de composition similaire, les particules plus petites fournissent généralement :
Plus de particules par unité de masse ;
Surface géométrique théorique plus élevée par unité de masse ;
Décantation plus lente due à la gravité ;
Une plus grande sensibilité à la formulation colloïdale ;
Dépendance accrue à l’égard du contenu en matériaux magnétiques et de la conception du séparateur.
Les performances réelles dépendent de la densité des particules, de la charge magnétique, de l'épaisseur de la coque de silice, de l'état d'agrégation et de la composition du tampon.
Suspension concentrée à 5 % de solides
Lorsqu'ils sont exprimés en p/v, 5 % de solides correspondent à environ 50 mg/mL.
Les calculs approximatifs de la masse des billes sont :
10 µL contiennent environ 0,5 mg ;
20 µL contiennent environ 1 mg ;
100 µL contiennent environ 5 mg ;
200 µL contiennent environ 10 mg ;
1 ml contient environ 50 mg.
Ces calculs ne doivent être utilisés qu’après avoir confirmé que la concentration est exprimée en p/v.
Un stock concentré peut prendre en charge une préparation flexible de concentrations de travail inférieures, une production pilote et une fabrication de réactifs en vrac.
Surface de silice adaptable
La surface de silice peut être utilisée comme point de départ pour introduire des groupes fonctionnels tels que :
Groupes aminés ;
Groupes carboxyles ;
Groupes époxy ;
Groupes aldéhyde ;
Groupes thiol-réactifs ;
Groupes tosyle ;
esters NHS;
Biotine ;
streptavidine;
Protéine A ou Protéine G.
Les fournisseurs commerciaux de particules magnétiques de silice fournissent généralement des dérivés natifs, aminés et carboxyles pour prendre en charge différentes stratégies de liaison aux biomolécules.
Convient au développement de la chimie des surfaces
L'AMS200-10 peut être utilisé par les équipes de recherche développant leurs propres :
Processus de silanisation ;
Chimie de couplage d'anticorps ;
Formulation bloquante ;
Tampon de stockage ;
Procédure de lavage magnétique ;
Formulation de particules pour immunoessais.
Approvisionnement de la recherche à la production
L'AMS200-10 peut prendre en charge :
Évaluation initiale du matériel ;
Criblage de fonctionnalisation de surface ;
Optimisation du couplage des anticorps ;
Études de faisabilité des immunoessais ;
Caractérisation des processus ;
Fabrication pilote ;
Évaluation de la stabilité ;
Tests de cohérence des lots ;
Achats de matières premières en gros.
Pourquoi choisir des perles magnétiques en silice de 200 nm ?
Nombre de particules élevé par unité de masse
Pour des particules de densité et de structure similaires, un format de 200 nm fournit beaucoup plus de particules individuelles par unité de masse que des billes de taille micrométrique.
Cela peut augmenter le nombre d’interactions particules-analytes disponibles dans un test en suspension.
Cependant, le nombre de particules à lui seul ne détermine pas la capacité de liaison fonctionnelle. D’autres facteurs importants comprennent :
Épaisseur de la coque de silice ;
Densité des groupes de surfaces ;
Efficacité de la fonctionnalisation ;
Taille du ligand ;
Orientation du ligand ;
Accessibilité stérique ;
Agrégation;
Formulation bloquante.
Décantation plus lente due à la gravité
Les particules submicroniques restent généralement en suspension plus longtemps que les billes magnétiques plus grosses.
Cela peut prendre en charge :
Échantillonnage plus uniforme ;
Capture de cible basée sur la suspension ;
Sédimentation réduite à court terme ;
Développement d’essais en petit volume.
Néanmoins, la stabilité à long terme et l’uniformité de la distribution doivent être vérifiées à l’aide de la formulation réelle.
Modification des surfaces flexibles
La silice native peut être modifiée chimiquement en utilisant une chimie de silane appropriée.
Cela permet aux chercheurs de développer différents dérivés de surface à partir d’une plateforme commune de particules magnétiques.
Matière première concentrée
Une suspension à 5 % peut réduire le volume de stockage et de manutention requis pour la fabrication pilote ou en vrac.
La concentration de travail doit être diluée et optimisée en fonction de la réaction de couplage et du test immunologique prévus.
Compromis important en matière de séparation magnétique
Les particules magnétiques submicroniques peuvent nécessiter un aimant plus puissant, un temps de collecte plus long ou un séparateur optimisé par rapport aux billes de plus grande taille du micron.
Les résultats des concurrents diffèrent considérablement. Magnostics rapporte une séparation rapide de ses propres particules de silice de 200 nm à haute magnétisation, tandis qu'un protocole de particules Ocean NanoTech de 200 nm indique que la collecte magnétique peut nécessiter plusieurs heures en fonction de la force de l'aimant. Ces valeurs sont spécifiques au produit et démontrent pourquoi l'AMS200-10 doit disposer de sa propre méthode de collecte magnétique validée.
Chimie des surfaces en silice et immobilisation des anticorps
Surface en silice native
Une surface de silice native contient des groupes silanol.
Ces groupes fournissent un point de départ pour la modification chimique mais ne fournissent pas automatiquement une réaction de couplage d’anticorps standardisée et prête à l’emploi.
L'adsorption passive directe peut se produire dans certaines conditions, mais elle peut entraîner :
Orientation variable des anticorps ;
Désorption partielle ;
Activité biologique réduite ;
Adsorption non spécifique plus élevée ;
Stabilité de stockage inférieure ;
Plus grande variation d’un lot à l’autre.
Pour les projets de développement de réactifs et de fabrication par lots, une voie d’immobilisation covalente validée est généralement préférable.
Surface de silice fonctionnalisée
La silice peut être modifiée pour introduire des groupes réactifs adaptés à l’immobilisation de biomolécules.
Des produits commerciaux à base de silice magnétique de 200 à 250 nm sont disponibles avec des surfaces natives OH, amino et carboxyle, confirmant que la chimie de la surface est un facteur majeur de sélection des produits.
Orientation des anticorps
La chimie de couplage peut influencer la façon dont l’anticorps est présenté à la surface des billes.
Le couplage aléatoire via plusieurs groupes aminés peut fournir un processus simple mais peut produire des orientations d’anticorps mixtes.
Des approches plus contrôlées peuvent impliquer :
Modification des anticorps dirigée vers les glucides ;
Chimie sélective Fc ;
Intermédiaires de protéine A ou de protéine G ;
Immobilisation biotine-streptavidine ;
Balises conçues spécifiquement pour le site.
La stratégie optimale dépend de la structure de l’anticorps, de l’accessibilité de la cible, de la sensibilité du test et des exigences de fabrication.
Options de fonctionnalisation de surface recommandées
Fonctionnalisation Amino
Un amino-silane peut être utilisé pour introduire des groupes amino en surface.
Les particules résultantes peuvent être couplées par des voies impliquant :
Glutaraldéhyde ;
agents de réticulation ester NHS ;
Agents de réticulation hétérobifonctionnels ;
Autre chimie réactive aux amines validée.
Les kits commerciaux de billes magnétiques d’amine de 200 nm utilisent une chimie de réticulation spécialisée pour conjuguer les anticorps, les protéines, les peptides et les oligonucléotides.
Fonctionnalisation carboxyle
Des groupes carboxyles peuvent être introduits sur la surface de la silice et activés à l’aide de la chimie EDC/NHS.
Cette voie est couramment utilisée pour coupler les amines primaires présentes sur :
Anticorps ;
Antigènes ;
Protéines ;
Peptides ;
Oligonucléotides amino-modifiés.
Les particules magnétiques carboxyliques commerciales de 200 nm utilisent cette stratégie pour la conjugaison de biomolécules et le développement de tests immunologiques.
Fonctionnalisation époxy
Les surfaces époxy peuvent réagir avec des groupes amino, thiol ou hydroxyle dans des conditions appropriées.
Cette voie peut offrir une immobilisation covalente stable mais nécessite normalement une optimisation minutieuse de :
pH ;
Force ionique ;
Temps de réaction ;
Température;
Concentration de ligands ;
Conditions de blocage.
Fonctionnalisation des aldéhydes
Les groupes aldéhyde peuvent réagir avec les amines primaires des protéines.
L’intermédiaire à base de Schiff résultant peut nécessiter une étape de réduction validée pour améliorer la stabilité de la liaison.
Fonctionnalisation Tosyl
Les surfaces Tosyl peuvent réagir avec des biomolécules contenant des amino ou des thiols sans étape d'activation distincte du carbodiimide.
Les particules magnétiques commerciales de silice tosyl de 200 nm sont commercialisées pour la conjugaison d'anticorps, de protéines, de peptides et d'oligonucléotides.
Fonctionnalisation de la streptavidine
Un revêtement de streptavidine peut fournir une surface d'affinité flexible pour les anticorps, antigènes et oligonucléotides biotinylés.
Cette approche sépare le processus de fabrication des particules de la sélection finale du ligand de capture.
Applications dans le développement d’immunoessais
Immunoessais sandwich magnétique
Après une fonctionnalisation de surface appropriée et une immobilisation des anticorps, l'AMS200-10 peut être évalué comme une phase solide magnétique dans des immunoessais sandwich.
Un test typique comprend :
Immobilisez l’anticorps de capture.
Incuber les particules recouvertes d'anticorps avec l'échantillon.
Capturez l'antigène cible.
Ajoutez un anticorps de détection marqué.
Séparez magnétiquement et lavez le complexe.
Générez le signal analytique.
Recherche sur les immunoessais par chimiluminescence
L'AMS200-10 fonctionnalisé peut être évalué pour le développement de tests immunologiques par chimiluminescence à particules magnétiques.
Le CLIA à particules magnétiques combine la séparation magnétique, l'immunoreconnaissance et la détection par chimiluminescence. Les développeurs commerciaux MPCLIA utilisent généralement des surfaces magnétiques carboxyle, amino, tosyle ou streptavidine plutôt que de la silice non traitée.
Les variables de développement importantes comprennent :
Voie de fonctionnalisation de surface ;
Densité de chargement d'anticorps ;
Degré de rétention de l’activité des anticorps ;
Dosage des perles ;
Temps de collecte magnétique ;
Efficacité de lavage ;
Signal vide ;
Rapport signal/arrière-plan ;
Compatibilité avec les plateformes automatisées.
Immunoessais compétitifs
Les particules fonctionnalisées peuvent être couplées à :
Conjugués de petites molécules ;
Haptènes ;
Antigènes ;
Anticorps anti-analytes ;
Ligands de capture biotinylés.
Ce format peut être évalué lorsque l'analyte ne peut pas supporter une structure sandwich conventionnelle.
Tests de détection d'anticorps
Une particule magnétique de silice fonctionnalisée peut être recouverte d'un antigène pour capturer des anticorps cibles à partir d'un échantillon.
Les domaines de recherche potentiels comprennent :
Dosages d’anticorps contre les maladies infectieuses ;
Dosages d'auto-anticorps ;
Études de réponse vaccinale ;
Dépistage d'antigènes recombinants.
Enrichissement immunomagnétique
Les particules fonctionnalisées par des anticorps peuvent être évaluées pour leur enrichissement :
Antigènes ;
Protéines ;
Microorganismes ;
Particules extracellulaires ;
Autres cibles reconnues par affinité.
Recherche sur les biocapteurs et les microfluidiques
Le format 200 nm peut également être évalué en :
Biocapteurs magnétiques ;
Capture de cibles microfluidiques ;
Amplification du signal magnétique ;
Analyses optiques basées sur les particules ;
Flux de travail de concentration d’échantillons.
Flux de travail général sur le couplage d’anticorps
Le flux de travail suivant est un cadre de développement et n'est pas un protocole AMS200-10 validé.
Étape 1 : Confirmez la surface native
Déterminez si l’AMS200-10 est fourni comme :
Silice native ;
Silice aminofonctionnelle ;
Silice à fonctionnalité carboxyle ;
Une autre surface activée.
Ne sélectionnez pas la chimie de couplage tant que la surface réelle n'a pas été confirmée.
Étape 2 : redisperser complètement les perles
Mélanger la suspension originale jusqu'à homogénéité.
Les méthodes possibles incluent :
Inversion douce ;
Mélange à rouleaux ;
Vortex contrôlé ;
Sonication de bain ;
Une autre méthode de dispersion validée.
Les conditions de sonication doivent être validées car une énergie excessive peut affecter le revêtement de surface, l’activité des biomolécules ou la formulation des particules.
Étape 3 : Laver ou équilibrer
Transférer la quantité de particules requise dans un tampon approprié.
Collectez magnétiquement les particules et remplacez le milieu de suspension d'origine si nécessaire.
Étant donné que les particules de 200 nm peuvent se collecter plus lentement que les billes de taille micronique, utilisez un séparateur et un temps de collecte validés pour le produit réel.
Étape 4 : Fonctionnaliser la surface en silice
Présentez le groupe de surfaces sélectionné à l’aide d’un processus contrôlé et validé.
Moniteur:
Concentration en silane ;
Teneur en eau ;
Composition du solvant ;
pH ;
Température de réaction ;
Temps de réaction ;
Concentration de particules ;
Mélange;
Lavage.
Étape 5 : Activer le groupe fonctionnel
Les exemples incluent :
Activation EDC/NHS des groupes carboxyle ;
Activation par le glutaraldéhyde des groupes aminés ;
Conditions de couplage époxy ;
Conditions de couplage tosyle ;
Préparation d'ester NHS ;
Une autre voie d’activation validée.
Étape 6 : Ajouter l'anticorps ou le ligand
Évaluez plusieurs ratios ligand-perle.
Les groupes expérimentaux possibles comprennent :
Faible chargement ;
Chargement moyen ;
Chargement élevé ;
Différents temps de réaction ;
Différentes conditions de pH ;
Différentes températures.
Étape 7 : Maintenir un mélange uniforme
Maintenir les particules en suspension tout au long de la réaction de couplage.
Éviter:
Décantation prolongée ;
Mousse excessive ;
Fort cisaillement ;
Température incontrôlée ;
Séchage des particules.
Étape 8 : Bloquer les sites réactifs restants
Sélectionnez un réactif bloquant compatible avec :
La chimie du couplage ;
L'anticorps ;
La matrice de l'échantillon ;
Le système de détection en aval.
Étape 9 : laver les perles conjuguées
Retirer:
Anticorps non lié ;
Réactifs activateurs résiduels ;
Produits secondaires ;
Protéines indésirables ;
Excès de réactif bloquant.
Étape 10 : Formuler la suspension définitive
La formulation finale peut inclure :
Tampon;
Sel;
Tensioactif ;
Stabilisateur de protéines ;
Stabilisant polymère ;
Sucre ou polyol ;
Conservateur;
Composant bloquant.
Étape 11 : Évaluer les performances fonctionnelles
Test:
Efficacité de chargement des anticorps ;
Capture de cible fonctionnelle ;
Liaison non spécifique ;
Signal vide ;
Signal positif ;
Récupération magnétique ;
Dispersion;
Précision;
Stabilité.
Comment optimiser l'AMS200-10 pour les immunoessais
Optimiser la chimie de surface
Comparez au moins deux itinéraires de fonctionnalisation lorsque cela est possible.
Les groupes de comparaison possibles comprennent :
Amino contre carboxyle ;
Carboxyle contre époxy ;
Couplage covalent versus streptavidine-biotine ;
Couplage aléatoire d’anticorps versus immobilisation orientée.
Optimiser le chargement d'anticorps
La charge d’anticorps la plus élevée ne fournit pas nécessairement le meilleur résultat analytique.
Une charge excessive peut provoquer :
Encombrement stérique ;
Accessibilité réduite des antigènes ;
Adsorption non spécifique accrue ;
Pontage de particules ;
Agrégation;
Signal vide plus élevé.
Optimiser le dosage des particules
Trop peu de particules peuvent limiter la capture de la cible.
Trop de particules peuvent augmenter :
Consommation de réactifs ;
Signal non spécifique ;
Exigences de lavage ;
Interférence de particules résiduelles ;
Temps de collecte magnétique.
Optimiser le blocage
Évaluez différents systèmes de blocage en utilisant la matrice d’échantillon réelle.
Les bloqueurs potentiels incluent :
Bloqueurs de protéines ;
Polymères synthétiques;
Tensioactifs non ioniques ;
Formulations dérivées de la caséine ;
Systèmes de blocage développés par le client.
Optimiser la séparation magnétique
Évaluer:
Force de l'aimant ;
Géométrie du séparateur ;
Géométrie du navire ;
Concentration de particules ;
Volume de l'échantillon ;
Viscosité du tampon ;
Heure de collecte ;
Volume de liquide résiduel.
Optimiser la dispersion
Évaluer:
Type et concentration du tensioactif ;
Force ionique ;
pH ;
Concentration en protéines ;
Fréquence de mélange ;
Conditions de sonication ;
Sensibilité au gel et au dégel.
Perles magnétiques de 200 nm ou microniques
Facteur de développement | Perles de 200 nm | Perles de 1 à 3 µm |
|---|---|---|
Nombre de particules par unité de masse | Généralement plus élevé | Généralement inférieur |
Surface géométrique théorique | Généralement plus élevé | Généralement inférieur |
Décantation par gravité | Généralement plus lent | Généralement plus visible |
Collection magnétique | Peut nécessiter plus d'optimisation | Souvent plus facile |
Sensibilité à la dispersion | Plus haut | Souvent inférieur |
Impact de l'agrégation | Peut fortement affecter la taille effective | Toujours important |
Visibilité manuelle | Faible | Plus facile à observer |
Manutention automatisée | Dépend de la plateforme | Communément évalué |
Meilleure application | Dépend du test | Dépend du test |
La taille des particules ne doit pas être sélectionnée seule.
D’autres facteurs importants comprennent :
Contenu magnétique ;
Chimie des surfaces ;
Distribution granulométrique ;
Densité de chargement d'anticorps ;
Activité du ligand ;
Liaison non spécifique ;
Récupération magnétique ;
Compatibilité des instruments ;
Stabilité.
Optimisation de la séparation magnétique et de la dispersion
Temps de collecte magnétique
Ne présumez pas que toutes les billes magnétiques de 200 nm se séparent à la même vitesse.
La collection magnétique dépend :
Contenu en matériau magnétique ;
Magnétisation à saturation ;
Concentration de particules ;
État d'agrégation ;
Force de l'aimant ;
Distance de l'aimant ;
Forme du navire ;
Viscosité du liquide ;
Volume d'échantillon.
Les instructions publiées par les concurrents vont d'une collecte rapide à plusieurs heures pour différents systèmes de particules de 200 nm, démontrant que le temps de collecte doit être mesuré pour l'AMS200-10 dans des conditions standardisées.
Contrôle d'agrégation
Évaluer l’agrégation à l’aide d’une méthode granulométrique appropriée.
Les causes potentielles comprennent :
Haute force ionique ;
pH proche de la région isoélectrique de la particule ;
Protéines incompatibles ;
Tensioactif insuffisant ;
Charge excessive d’anticorps ;
Blocage incomplet ;
Séchage répété ;
Longue exposition à l'aimant.
Redispersion
Après collecte magnétique, évaluez :
Facilité de redispersion ;
Granulats résiduels ;
Récupération granulométrique ;
Activité fonctionnelle des anticorps ;
Récupération magnétique après des cycles répétés.
Comment évaluer les performances du couplage et du test
Fonctionnalisation des surfaces
Les tests possibles incluent :
Potentiel Zêta ;
Titrage de groupes de surfaces ;
Analyse élémentaire ;
Analyse spectroscopique ;
Réaction fonctionnelle du colorant ;
Un autre test de surface validé.
Efficacité de chargement d'anticorps
Mesurez la concentration d’anticorps avant et après le couplage.
Un calcul approximatif est :
Anticorps chargé = Anticorps initial − Anticorps non lié
Les méthodes analytiques potentielles comprennent :
Absorbance UV ;
Dosage BCA ;
essai de Bradford ;
Mesure de fluorescence ;
ELISA;
Un autre test de protéines validé.
Capture de cible fonctionnelle
La charge chimique en anticorps ne prouve pas que l’anticorps immobilisé reste actif.
Les tests fonctionnels doivent mesurer :
Capacité de capture de cibles ;
Signal positif ;
Signal négatif ;
Rapport signal/arrière-plan ;
Récupération;
Spécificité.
Liaison non spécifique
Comparer:
Particules de silice non modifiées ;
Particules fonctionnalisées mais non conjuguées ;
Particules conjuguées à des anticorps ;
Particules bloquées ;
Matrices d'échantillons négatifs ;
Échantillons positifs.
Récupération magnétique
Déterminer la récupération des particules après :
Collecte initiale ;
Lavages répétés ;
Incubation prolongée ;
Manutention automatisée ;
Stockage.
Performances des immunoessais
Évaluer:
Signal vide ;
Signal faiblement positif ;
Signal hautement positif ;
Précision;
Récupération;
Linéarité ;
Spécificité;
Effet crochet ;
Ingérence;
Stabilité.
Contrôle qualité pour la production par lots
Contrôle de qualité physique
Les éléments recommandés incluent :
Apparence;
Taille des particules ;
Distribution granulométrique ;
Polydispersité ;
Teneur en solides ;
Uniformité des suspensions ;
Comportement de sédimentation ;
Redispersion.
Contrôle qualité des surfaces en silice
Les éléments recommandés incluent :
Consistance d'une coque de silice ;
Disponibilité des silanols en surface ;
Densité des groupes de surfaces après modification ;
Frais de surface ;
Rendement de fonctionnalisation ;
Réactifs chimiques résiduels.
Contrôle qualité magnétique
Standardiser:
Type d'aimant ;
Navire;
Concentration de particules ;
Volume de l'échantillon ;
Viscosité du tampon ;
Heure de collecte ;
Concentration résiduelle de particules.
Contrôle qualité fonctionnel
Après modification de la surface, évaluez :
Capacité de chargement d’anticorps ;
Activité fonctionnelle des anticorps ;
Liaison non spécifique ;
Performances de capture de cible ;
Signal d'immunoessai ;
Stabilité.
Cohérence d'un lot à l'autre
Pour la fabrication par lots, établissez des plages d’acceptation pour :
Taille des particules ;
Teneur en solides ;
Chimie des surfaces ;
Collection magnétique ;
Dispersion;
Performances de couplage ;
Résultats des tests fonctionnels.
L’approbation finale des matières premières doit être basée sur le flux de travail complet de couplage client et d’analyse.
Mise à l’échelle et approvisionnement en vrac
Étape d'évaluation
Les grandeurs d’évaluation peuvent prendre en charge :
Criblage de fonctionnalisation de surface ;
Comparaison couplage-chimie ;
Optimisation du chargement des anticorps ;
Tests de séparation magnétique ;
Développement initial de tests immunologiques.
Étape à l’échelle pilote
Les quantités pilotes peuvent prendre en charge :
Confirmation du processus ;
Études de mixage ;
Évaluation du réacteur ;
Développement de procédés de lavage ;
Tests de stabilité ;
Évaluation du processus de remplissage.
Étape de production par lots
La planification de l'approvisionnement en vrac peut inclure :
Demande annuelle ;
Volume d'emballage ;
Concentration du produit ;
Spécifications des particules ;
Documents techniques ;
Documents de qualité ;
Exigences relatives aux lots réservés ;
Exigences en matière de contrôle des changements ;
Planification des stocks de sécurité.
Considérations relatives à la mise à l'échelle
Un processus de modification de surface en laboratoire ne doit pas être mis à l’échelle uniquement en multipliant les volumes de réactifs.
Revalider :
Géométrie du navire ;
Efficacité du mélange ;
Homogénéité des particules ;
Séquence d'ajout de réactif ;
Conditions de silanisation ;
Température de réaction ;
Efficacité de lavage ;
Collection magnétique ;
Temps de maintien du processus ;
Uniformité finale du remplissage.
Services de perles magnétiques en silice personnalisés
SHBC peut évaluer les besoins personnalisés en billes magnétiques de silice pour les entreprises de biotechnologie, les instituts de recherche et les fabricants de réactifs.
Les options de personnalisation potentielles incluent :
Tailles de particules alternatives ;
Teneur en solides personnalisée ;
Surfaces amino-fonctionnelles ;
Surfaces à fonctionnalité carboxyle ;
Surfaces fonctionnelles époxy ;
Surfaces à fonctionnalité aldéhyde ;
Surfaces tosyl-fonctionnelles ;
Surfaces enduites de streptavidine ;
Densité de groupes de surfaces spécifique au client ;
Tampon de suspension personnalisé ;
Volume d'emballage personnalisé ;
Fabrication à l’échelle pilote ;
Fabrication en vrac ;
Emballages OEM et marques privées ;
Tests de qualité spécifiques au client.
La faisabilité de la personnalisation dépend de la spécification demandée, de l'application prévue, des exigences de validation et de la quantité commandée.
Recommandations de stockage et de manipulation
Conservez l'AMS200-10 conformément à l'étiquette du produit, au TDS et au CoA spécifique au lot.
Les recommandations générales de manipulation comprennent :
Bien mélanger avant de prélever des échantillons ;
Utiliser du matériel propre et calibré ;
Maintenir l'uniformité de la suspension pendant la distribution ;
Évitez de laisser sécher les particules ;
Évitez de geler à moins d'être spécifiquement validé ;
Prévenir la contamination microbienne et chimique ;
Évitez l'exposition prolongée à un champ magnétique puissant ;
Confirmer la compatibilité avant l'échange de tampon ;
Valider les conditions de sonication avant une utilisation de routine ;
Enregistrez le numéro de lot du produit ;
Évaluez séparément la stabilité des perles fonctionnalisées.
Les fournisseurs commerciaux de nanoparticules magnétiques recouvertes de silice recommandent généralement d’éviter le gel et de maintenir une suspension uniforme avant utilisation. Les conditions spécifiques au produit pour l'AMS200-10 doivent être confirmées à l'aide de sa propre documentation technique.
Foire aux questions
Qu’est-ce que l’AMS200-10 ?
L'AMS200-10 est une suspension de billes magnétiques recouvertes de silice de 200 nm, fournie à 5 % de solides pour la recherche sur la fonctionnalisation de surface, le développement de supports magnétiques, l'immobilisation de biomolécules et la fabrication par lots.
Que signifie 5 % de solides ?
Lorsqu'ils sont exprimés en poids/volume, 5 % de solides correspondent à environ 50 mg de matériau de billes magnétiques par millilitre. La base de concentration doit être confirmée dans la fiche technique du produit.
L'AMS200-10 est-il fourni avec une surface en silice native ?
La surface du produit doit être confirmée dans la fiche technique applicable. S'ils sont fournis sous forme de silice native, les groupes de surface primaires devraient être des groupes hydroxyle ou silanol associés à la silice.
Les anticorps peuvent-ils être couplés directement à l’AMS200-10 ?
La silice native n’est pas automatiquement une surface de couplage d’anticorps standardisée et prête à l’emploi. L’immobilisation d’anticorps covalents stables nécessite normalement un processus de fonctionnalisation et de couplage de surface validé.
Quels groupes fonctionnels peuvent être introduits sur la silice ?
Les modifications potentielles incluent les surfaces amino, carboxyle, époxy, aldéhyde, tosyle, NHS, biotine et streptavidine.
L’AMS200-10 peut-il être utilisé pour le développement de tests immunologiques ?
Oui, il peut être évalué comme matériau de base magnétique pour le développement de tests immunologiques après fonctionnalisation de surface appropriée et immobilisation d’anticorps ou d’antigènes.
L’AMS200-10 peut-il être évalué pour CLIA ?
L'AMS200-10 fonctionnalisé peut être évalué pour la recherche par immunoessai par chimiluminescence. La collecte magnétique, le lavage, le fond de signal et la compatibilité de l'analyseur doivent être validés.
Pourquoi choisir une taille de particule de 200 nm ?
Le format 200 nm fournit généralement plus de particules et une plus grande surface théorique par unité de masse que les particules de taille micronique, tout en montrant une sédimentation plus lente. La collection magnétique peut nécessiter davantage d’optimisation.
En quoi les billes de 200 nm diffèrent-elles des billes de 1 µm ?
Par rapport aux billes similaires de 1 µm, les particules de 200 nm fournissent généralement plus de particules individuelles par unité de masse et une sédimentation plus lente, mais peuvent être plus sensibles aux conditions d'agrégation et de séparation magnétique.
À quelle vitesse l’AMS200-10 peut-il être séparé magnétiquement ?
Le temps de collecte dépend du contenu magnétique, de la force de l'aimant, de la concentration des particules, de la géométrie du récipient, de la viscosité du liquide et de l'état d'agrégation. Une méthode spécifique au produit doit être établie.
L’AMS200-10 peut-il être soniqué ?
La sonication en bain ou une autre méthode de dispersion peut être évaluée, mais l'énergie, la durée et la température autorisées doivent être confirmées à l'aide d'une validation spécifique au produit.
Quelle voie de couplage est recommandée pour les anticorps ?
Le tracé privilégié dépend de la surface fonctionnalisée. Les exemples incluent EDC/NHS pour les surfaces carboxyle, le glutaraldéhyde ou les agents de réticulation pour les surfaces aminées, et les réactions directes pour les surfaces époxy ou tosyle.
Est-ce qu'une plus grande quantité d'anticorps améliore toujours la sensibilité du test ?
Non. Une charge excessive d’anticorps peut provoquer un encombrement stérique, une agrégation, une accessibilité réduite à l’antigène et un signal non spécifique plus élevé.
Comment mesurer l’efficacité du chargement des anticorps ?
Comparez la quantité initiale d’anticorps avec l’anticorps non lié restant dans le surnageant post-couplage. Les performances fonctionnelles de capture de cibles doivent également être mesurées.
Comment réduire l’agrégation ?
Évaluez le pH, la force ionique, la concentration en tensioactif, la concentration en protéines, la formulation bloquante, les conditions de mélange et la densité de chargement des particules.
L'AMS200-10 peut-il être utilisé avec des analyseurs automatisés ?
Il peut être évalué pour des systèmes automatisés ou semi-automatisés. La collecte magnétique, la distribution, le lavage, la redispersion et la compatibilité fluidique doivent être validées sur la plateforme spécifique.
L'AMS200-10 est-il un réactif de dosage immunologique fini ?
L'AMS200-10 est fourni comme matière première pour la recherche et le développement de réactifs. Le client est responsable de la modification de la surface, de l'immobilisation du ligand et de la validation du réactif fini.
Des évaluations et des quantités en vrac sont-elles disponibles ?
Les exigences en matière d’évaluation, de pilotage et d’approvisionnement en vrac peuvent être discutées en fonction de la chimie de surface prévue, de l’application et de la demande annuelle.
SHBC peut-il fournir des billes magnétiques de silice fonctionnalisées ?
Les options personnalisées d'amino, de carboxyle, d'époxy, de tosyle, de streptavidine et d'autres surfaces peuvent être évaluées en fonction des spécifications requises et de la quantité de commande.
Demander un échantillon ou un devis groupé
Contactez SHBC pour demander un échantillon d’évaluation, des informations techniques ou un devis groupé pour les perles magnétiques de silice AMS200-10 de 200 nm.
Veuillez fournir :
Application prévue pour le test immunologique ou la séparation ;
Chimie de surface requise ;
Anticorps, antigène, protéine ou autre ligand ;
Poids moléculaire du ligand ;
Chimie de couplage préférée ;
Exemple de matrice ;
Séparateur ou analyseur magnétique ;
Quantité d'évaluation requise ;
Quantité estimée de pilotes ;
Demande annuelle prévue ;
Volume d'emballage préféré ;
Documents techniques requis ;
Documents de qualité requis ;
Calendrier de développement cible ;
Exigences de spécifications personnalisées.
SHBC soutient des projets de billes magnétiques de silice depuis l'évaluation des particules brutes et le développement de la fonctionnalisation de surface jusqu'à l'immobilisation d'anticorps, la validation pilote et la fabrication en vrac.


