Microesferas de estreptavidina de 20 um SAPS20UM-10 1%

Microesferas de estreptavidina de 20 µm para investigación biológica

Las microesferas de estreptavidina SHBC SAPS20UM-10 son microesferas funcionalizadas en superficie de 20 µm desarrolladas para la inmovilización y captura de anticuerpos, antígenos, proteínas, péptidos, enzimas, receptores, oligonucleótidos, ADN, ARN, aptámeros y otras moléculas marcadas con biotina biotinilados.

El producto se suministra como una suspensión de sólidos al 1 % y está diseñado para investigación biológica, desarrollo de inmunoensayos basados ​​en perlas, estudios de interacción de afinidad, captura de ácido nucleico, microscopía, microfluidos, investigación de interacción célula-partícula, biosensores basados ​​en partículas y fabricación de reactivos de investigación.

El diámetro de las partículas de 20 µm proporciona una gran superficie de microesferas individuales y una población de partículas del tamaño de una micra claramente visible. En comparación con las microesferas más pequeñas, las partículas pueden ser más fáciles de observar mediante microscopía, identificarse en sistemas analíticos basados ​​en partículas y recuperarse mediante un método de separación adecuadamente validado.

Shanghai SanYu Biotechnology Co., Ltd. respalda la evaluación de muestras de investigación, el desarrollo a escala piloto, la fabricación repetida, los proyectos OEM, la cooperación con marcas privadas y el suministro a granel para empresas de biotecnología, universidades, institutos de investigación, fabricantes de reactivos, desarrolladores de instrumentos y organizaciones de investigación biológica.

Respuesta rápida del producto

SAPS20UM-10 es una suspensión de microesferas recubiertas de estreptavidina de 20 µm suministrada con un 1 % de sólidos. Su superficie funcional con estreptavidina captura biomoléculas biotiniladas para ensayos biológicos, inmovilización de anticuerpos y proteínas, captura de ácidos nucleicos, microscopía, estudios de interacción celular, investigación de afinidad y desarrollo de sistemas de detección basados ​​en partículas.

Productos destacados

• Nombre del producto: Microesferas de estreptavidina de 20 µm

• Número de catálogo: SAPS20UM-10

• Marca: SHBC

• Fabricante: Shanghai SanYu Biotechnology Co., Ltd.

• Diámetro nominal de partícula: 20 µm

• Modificación de superficie: estreptavidina

• Contenido de sólidos: 1%

• Principio de unión: afinidad estreptavidina-biotina

• Forma física: Suspensión acuosa de microesferas.

• Aplicación principal: investigación biológica y desarrollo de ensayos basados ​​en perlas.

• Capacidad de suministro: muestras, lotes piloto y producción a granel.

• Personalización: Disponible según viabilidad técnica

• Uso previsto: uso exclusivo en investigación

¿Qué son las microesferas de estreptavidina SAPS20UM-10?

SAPS20UM-10 consta de microesferas de 20 µm con estreptavidina inmovilizada en la superficie de la partícula.

El recubrimiento de estreptavidina proporciona sitios de unión para moléculas biotiniladas. Un anticuerpo, proteína, péptido, sonda de ácido nucleico, receptor, ligando u otra biomolécula biotinilada se puede unir a la microesfera sin requerir la activación directa con carbodiimida de la superficie de la partícula por parte del usuario final.

Una vez inmovilizada la molécula de captura, las microesferas preparadas pueden funcionar como fase sólida para:

• captura de objetivos

• Inmovilización de biomoléculas

• Detección de anticuerpos

• Análisis de interacción de proteínas.

• Hibridación de ácidos nucleicos.

• Estudios de unión a la superficie celular.

• Ensayos basados ​​en microscopía.

• Biosensores basados ​​en partículas

• Investigación de microfluidos

• Investigación sobre aglutinación

• Inmunoensayos basados ​​en perlas

• Estudios de separación por afinidad

Las posibles moléculas de captura biotiniladas incluyen:

• Anticuerpos monoclonales

• Anticuerpos policlonales

• Anticuerpos recombinantes

• Fragmentos de anticuerpos

• Antígenos

• Proteínas recombinantes

• Péptidos

• enzimas

• Receptores

• Lectinas

• Factores de crecimiento

• Sondas de oligonucleótidos

• sondas de ADN

• sondas de ARN

• Productos de PCR

• aptámeros

• Pequeñas moléculas biotiniladas.

El diámetro de partícula de 20 µm es significativamente mayor que los tamaños de partícula comúnmente utilizados para inmunoensayos con un número elevado de partículas. Esto le da a cada microesfera individual una superficie física relativamente grande pero da como resultado menos partículas por unidad de masa que microesferas más pequeñas del mismo material.

Por tanto, el producto es especialmente adecuado cuando la prioridad de investigación incluye:

• Gran superficie por partícula individual

• Observación microscópica directa.

• Identificación clara de partículas

• Modelado de partículas en rangos de tamaño de celda

• Análisis de partículas individuales

• Manipulación controlada de partículas

• Estudios de transporte de microfluidos.

• Fácil confirmación visual de la recuperación.

• Sistemas de partículas codificadas por tamaño

SAPS20UM-10 se suministra como materia prima de investigación. No debe representarse automáticamente como un reactivo de diagnóstico terminado, un estándar de partículas certificado, una perla de conteo absoluto, un producto de separación magnética o una microesfera fluorescente interna, a menos que esas funciones estén incluidas específicamente en la especificación final.

SAPS20UM-10 Especificaciones técnicas

Los siguientes parámetros deben confirmarse utilizando la especificación del producto final o el Certificado de análisis específico del lote:

• Material de partículas

• Diámetro medio de partículas

• Rango de tamaño de partículas

• Distribución del tamaño de partículas

• Coeficiente de variación del tamaño de partícula.

• Morfología de partículas

• Densidad de partículas

• Nivel de recubrimiento de estreptavidina

• Capacidad de unión a biotina

• Concentración del número de partículas

• Tampón de suspensión

• pH del tampón

• Estabilizador o tensioactivo

• Preservativo

• Condiciones de separación recomendadas

• Tamaño del paquete

• Duración

• Condiciones de almacenamiento

La capacidad de unión a biotina debe informarse junto con:

• La sonda de prueba biotinilada

• Peso molecular de la sonda.

• Número de grupos de biotina

• Búfer de enlace

• Condiciones de incubación

• Procedimiento de lavado

• Método de detección

• Base de cálculo

• Resultado específico del lote

El valor del 1% de sólidos por sí solo no puede determinar el número de partículas por mililitro o la cantidad de ligando biotinilado que se puede inmovilizar.

Cómo funciona la unión estreptavidina-biotina

La estreptavidina es una proteína de unión a biotina que permite la unión estable no covalente de moléculas biotiniladas a la superficie de las microesferas.

Cuando se mezcla un ligando biotinilado con SAPS20UM-10, el grupo biotina se une a los sitios de estreptavidina disponibles en la partícula.

La estructura general se puede representar como:

Superficie de microesferas – Estreptavidina – Biotina – Molécula de captura

Para un ensayo sándwich basado en anticuerpos, la estructura puede ser:

Microesfera – Estreptavidina – Anticuerpo de captura biotinilado – Antígeno objetivo – Anticuerpo de detección

Si el anticuerpo de detección lleva un marcador fluorescente, enzimático, colorimétrico, quimioluminiscente u otro marcador medible, la cantidad de diana asociada con las partículas se puede evaluar usando un método de detección compatible.

Ventajas de la inmovilización con estreptavidina y biotina

• La activación directa de EDC/NHS normalmente es innecesaria cuando se cargan ligandos biotinilados.

• Una plataforma de microesferas se puede utilizar con muchas moléculas biotiniladas diferentes.

• Se pueden inmovilizar anticuerpos, proteínas, péptidos, oligonucleótidos, ADN, ARN y aptámeros.

• La carga de ligando se puede realizar en condiciones acuosas relativamente suaves.

• Las moléculas de captura se pueden cambiar sin rediseñar la microesfera base.

• La plataforma admite el desarrollo de ensayos modulares.

• La carga de ligando se puede optimizar por separado de la detección del objetivo.

• Las microesferas se pueden utilizar con diferentes sistemas indicadores.

• La plataforma puede admitir investigaciones de objetivo único y múltiples.

Factores que afectan el rendimiento vinculante

La carga final del ligando y el rendimiento del ensayo pueden verse afectados por:

• Densidad del recubrimiento de estreptavidina

• Actividad de estreptavidina

• Nivel de biotinilación

• Ubicación de los grupos de biotina.

• Accesibilidad a la biotina

• Longitud del espaciador

• Tamaño molecular del ligando

• Pureza del ligando

• Agregación de ligandos

• Apiñamiento de superficie

• Composición del búfer

• Concentración de sal

• tiempo de incubación

• Temperatura de incubación

• Método de mezcla

• Sedimentación de partículas

La biotina libre y los reactivos biotinilados que no han reaccionado pueden competir con la molécula de captura prevista por los sitios de unión de estreptavidina disponibles. Por lo tanto, la eliminación de la biotina libre o del exceso de cebador biotinilado puede ser importante antes de la inmovilización del ligando.

¿Por qué elegir microesferas de estreptavidina de 20 µm?

Gran superficie por microesfera individual

Una microesfera de 20 µm proporciona una superficie física más grande por partícula individual que las partículas de 10 µm, 5 µm, 3 µm o 1 µm.

Esto puede resultar útil cuando:

• Se requiere una gran cantidad de molécula de captura en cada partícula individual.

• Se desea una fuerte generación de señales por partícula

• Las partículas individuales se observarán mediante microscopía.

• Se requiere análisis partícula por partícula

• Se necesita un modelo sintético de rango de tamaño de celda

• Se investigarán los patrones de superficie o la unión localizada.

Una partícula más grande no necesariamente proporciona una mayor superficie total por miligramo. Las partículas más pequeñas generalmente proporcionan una mayor cantidad de partículas y más área de superficie colectiva a la misma concentración de masa.

Fácil observación microscópica

El tamaño de 20 µm hace que las partículas individuales sean comparativamente fáciles de observar utilizando microscopía confocal, de contraste de fase, de fluorescencia o de campo brillante adecuada.

La microscopía puede admitir:

• Evaluación de la morfología de las partículas.

• Detección agregada

• Visualización de unión a ligando

• Estudios de interacción célula-partícula.

• Análisis de fluorescencia de superficie.

• Localización de partículas

• Seguimiento de microfluidos

• Confirmación de recuperación de partículas.

Fuerte identificación de partículas

Las microesferas grandes se pueden diferenciar claramente de los desechos pequeños y muchas partículas de fondo en sistemas analíticos basados ​​en flujo, microfluidos, recuento de partículas y de imágenes.

Adecuado para investigaciones de rangos de tamaño de células

El diámetro de 20 µm está dentro del amplio rango de tamaño de muchas células eucariotas y estructuras biológicas del tamaño de una célula.

SAPS20UM-10 puede evaluarse para:

• Investigación de modelos celulares sintéticos

• Transporte de partículas del tamaño de una célula.

• Estudios de contacto entre partículas y células.

• Fagocitosis o investigación de captación.

• Interacción del receptor de la superficie celular.

• Manipulación mecánica en sistemas de microfluidos.

• Desarrollo de sistemas de imágenes

Las microesferas sintéticas no reproducen todas las propiedades ópticas, mecánicas, químicas o biológicas de las células vivas. La idoneidad como modelo celular debe validarse para cada proyecto.

Recuperación y manipulación convenientes

Las partículas grandes pueden ser comparativamente fáciles de recuperar mediante un método optimizado de centrifugación, filtración o sedimentación controlada.

El método más adecuado depende de:

• Densidad de partículas

• Material de partículas

• Volumen de procesamiento

• fuerza centrífuga

• tiempo de centrifugación

• Tamaño de poro del filtro

• Geometría del tubo

• Viscosidad del tampón

• Concentración de surfactante

• Tasa de recuperación requerida

Adecuado para ensayos codificados por tamaño

La población de 20 µm se puede combinar con poblaciones de microesferas más pequeñas en sistemas de investigación que distinguen las partículas por tamaño.

La codificación basada en el tamaño puede resultar útil en:

• Ensayos multiplex

• Investigación de múltiples analitos

• Controles de proceso

• Ensayos basados ​​en imágenes

• Clasificación de microfluidos

• Experimentos de seguimiento de partículas.

Características y beneficios clave

Diámetro nominal de partícula de 20 µm

El gran tamaño de las microesferas permite la observación directa, el análisis de partículas individuales, la identificación basada en el tamaño, el modelado biológico y la manipulación de partículas.

Superficie funcional de estreptavidina

La superficie captura anticuerpos, antígenos, proteínas, péptidos, enzimas, oligonucleótidos, ADN, ARN, aptámeros, receptores y otras moléculas que contienen biotina biotinilados.

Suspensión de sólidos al 1%

SAPS20UM-10 se suministra con un 1 % de sólidos y se puede diluir según el número de partículas, el volumen de reacción, la capacidad de unión y el método de detección requeridos.

Inmovilización simple de ligando de captura

Las moléculas de captura biotiniladas pueden unirse sin activación química directa de la superficie de la microesfera por parte del usuario final.

Gran superficie por partícula

Cada microesfera de 20 µm proporciona una superficie física comparativamente grande para la inmovilización de ligandos y la generación de señales.

Adecuado para múltiples plataformas de detección

Las partículas pueden evaluarse con:

• Microscopía óptica

• Microscopía de fluorescencia

• microscopía confocal

• Citometría de flujo

• Citometría de flujo por imágenes

• Sistemas de microfluidos

• Ensayos basados ​​en placas

• Sistemas de conteo de partículas

• Detección colorimétrica

• Detección fluorescente

Plataforma modular de ensayos biológicos

Se puede utilizar la misma plataforma de partículas con diferentes moléculas de captura biotiniladas.

Capacidad de producción a granel

SHBC admite muestras, lotes piloto, producción repetida, cooperación OEM, proyectos de marcas privadas y suministro a granel.

Opciones de desarrollo personalizadas

El tamaño de las partículas, el nivel de recubrimiento de estreptavidina, la capacidad de unión, la concentración, el tampón, el conservante, la codificación fluorescente, la codificación de colores, el embalaje y las especificaciones de calidad se pueden discutir para proyectos calificados.

Aplicaciones de investigación biológica

Desarrollo de inmunoensayos basados ​​en perlas

SAPS20UM-10 se puede utilizar como fase sólida en ensayos de investigación tipo sándwich, indirectos, competitivos o basados ​​en aglutinación.

Un ensayo tipo sándwich puede incluir:

1. Inmovilización de un anticuerpo de captura biotinilado.

2. Bloqueo de superficies desocupadas.

3. Incubación con la muestra objetivo.

4. Captura del analito objetivo.

5. Adición de un anticuerpo de detección marcado.

6. Eliminación de reactivos no unidos.

7. Detección de la señal asociada a partículas.

Los objetivos potenciales de la investigación incluyen:

• Anticuerpos

• Antígenos

• Citoquinas

• hormonas

• Factores de crecimiento

• enzimas

• Biomarcadores

• Proteínas asociadas a patógenos

• Analitos de seguridad alimentaria

• Objetivos medioambientales

• Objetivos de investigación veterinaria

• Compuestos de investigación

Ensayos de unión competitiva

Se pueden evaluar formatos de ensayo competitivos para:

• Moléculas pequeñas

• haptenos

• Drogas

• Toxinas

• Péptidos

• hormonas

• metabolitos

• Objetivos con sitios de unión limitados

La relación entre la concentración objetivo y la señal medida depende del diseño del ensayo.

Inmovilización y detección de anticuerpos

Se pueden unir anticuerpos biotinilados para:

• Detección de antígenos

• Detección de anticuerpos

• Detección de hibridomas

• Estudios de especificidad de anticuerpos.

• Evaluación de reactividad cruzada

• Comparación de afinidad

• Selección de anticuerpos de captura.

• Pruebas de viabilidad del ensayo.

Investigación sobre la interacción de proteínas y péptidos

Se pueden inmovilizar proteínas o péptidos biotinilados para investigar:

• Interacciones anticuerpo-antígeno

• Interacciones proteína-proteína

• Unión receptor-ligando

• Reconocimiento de epítopos

• Interacciones enzima-sustrato

• Detección de inhibidores

• Vinculación fármaco-candidato

• Comparación de afinidad de proteínas

Captura de ácido nucleico

Se pueden unir oligonucleótidos biotinilados, ADN, ARN, productos de PCR y aptámeros a SAPS20UM-10.

Las aplicaciones potenciales incluyen:

• Captura específica de secuencia

• Desarrollo de ensayos de hibridación.

• Captura de productos de PCR

• Investigación de genotipado

• Investigación de detección de mutaciones

• Detección basada en aptámeros

• Estudios de interacción ADN-proteína.

• Investigación de unión a ARN

• Desarrollo de ensayos moleculares.

Investigación sobre la interacción célula-partícula

Cuando se funcionalizan con un anticuerpo, ligando, receptor, lectina o péptido biotinilado adecuado, las partículas pueden evaluarse para determinar su interacción con las células.

Las posibles direcciones de investigación incluyen:

• Reconocimiento de receptores de superficie celular.

• Adhesión celular

• Unión celular mediada por ligando

• Interacción de células inmunes

• absorción de partículas

• fagocitosis

• Imágenes celulares

• Investigación de clasificación celular

• Investigación de partículas presentadoras de antígenos sintéticos

Las variables importantes incluyen:

• Densidad de ligando de captura

• Relación partícula-celda

• Concentración celular

• tiempo de incubación

• Temperatura

• Método de mezcla

• Condiciones de lavado

• Viabilidad celular

• Agregación de partículas

• Apego no específico

Microscopía e Imagenología

Las partículas de 20 µm pueden soportar:

• Imágenes de campo brillante

• Imágenes de fluorescencia

• microscopía confocal

• Imágenes de alto contenido

• Localización de partículas

• Imágenes de interacción célula-partícula

• Análisis de fluorescencia de superficie.

• Desarrollo de ensayos basados ​​en imágenes.

Investigación de microfluidos

SAPS20UM-10 podrá evaluarse en:

• Estudios de transporte de partículas.

• Investigación de flujo de microcanales.

• Separación basada en el tamaño

• atrapamiento de partículas

• Enfoque hidrodinámico

• Imágenes en dispositivos de microfluidos.

• Manipulación de partículas del tamaño de una célula.

• Pruebas de rendimiento del dispositivo

Confirme que las dimensiones del microcanal y la ruta de flujo más estrecha sean compatibles con partículas de 20 µm.

Investigación sobre aglutinación

Las microesferas de estreptavidina grandes se pueden evaluar en métodos de aglutinación de partículas cuando la unión de una molécula objetivo o puente provoca una agrupación de partículas mensurable.

La aglutinación se puede observar usando:

• Microscopía

• Imagen óptica

• Métodos de dispersión de luz

• Patrones de sedimentación

• Análisis de imágenes automatizado

La relación entre agregación y concentración objetivo debe optimizarse experimentalmente.

Captura y separación por afinidad

Las partículas pueden evaluarse para determinar la captura por afinidad de biomoléculas biotiniladas o dianas reconocidas por ligandos inmovilizados.

SAPS20UM-10 no es necesariamente magnético. La recuperación de partículas debe utilizar un método compatible con el material de partículas confirmado.

Biomoléculas biotiniladas compatibles

Anticuerpos biotinilados

Los posibles formatos de anticuerpos incluyen:

• IgG de longitud completa

• IgM

• Fragmentos fabulosos

• Fragmentos F(ab′)₂

• Anticuerpos recombinantes

• Fragmentos variables de cadena única

• Anticuerpos de dominio único

• Formatos de anticuerpos diseñados

La actividad de los anticuerpos después de la inmovilización depende de:

• Química de biotinilación

• Número de grupos de biotina

• Ubicación de los grupos de biotina.

• Longitud del espaciador

• Pureza de proteínas

• Agregación de anticuerpos

• Carga superficial

• Condiciones de almacenamiento

Proteínas biotiniladas

Los ejemplos incluyen:

• Antígenos recombinantes

• enzimas

• Citoquinas

• Factores de crecimiento

• Receptores

• Lectinas

• Proteínas de unión

• Proteínas de fusión

• Estándares de proteínas

Péptidos biotinilados

Las aplicaciones potenciales incluyen:

• Mapeo de epítopos

• Detección de anticuerpos

• Investigación de unión a receptores

• Estudios enzimáticos

• Estudios de interacción de proteínas.

• Ensayos de detección de drogas

Un espaciador adecuado entre la biotina y el péptido puede mejorar la accesibilidad.

Ácidos nucleicos biotinilados

Los formatos compatibles pueden incluir:

• ADN monocatenario

• ADN bicatenario

• ARN

• Sondas de oligonucleótidos

• amplicones de PCR

• aptámeros

• Sondas de ácido nucleico modificadas

• Capturar secuencias

Moléculas pequeñas biotiniladas

Los pequeños compuestos biotinilados pueden inmovilizarse cuando el grupo de la biotina permanece accesible.

Durante el desarrollo del método se deben considerar el diseño del espaciador y la orientación molecular.

Protocolo de carga de ligando biotinilado recomendado

El siguiente procedimiento es un punto de partida del desarrollo general. Las condiciones finales deben optimizarse para la biomolécula y la aplicación reales.

1. Resuspender SAPS20UM-10

Deje que el producto alcance la temperatura de manipulación recomendada.

Mezcle mediante inversión suave, rotación o agitación controlada hasta que la suspensión sea homogénea.

Debido a que las partículas de 20 µm pueden sedimentar rápidamente, mezcle la suspensión inmediatamente antes de retirar cada alícuota.

Continúe mezclando suavemente durante el muestreo repetido para reducir las diferencias de concentración entre alícuotas.

2. Calcule la cantidad de partículas requerida

Determine la cantidad requerida de acuerdo con:

• Número de pruebas

• Partículas requeridas por prueba

• Superficie requerida por reacción

• Volumen de reacción

• Concentración objetivo esperada

• Capacidad de encuadernación específica del lote

• Número de pasos de lavado

• Pérdida de procesamiento esperada

No estime la capacidad de carga de ligandos únicamente a partir de la concentración de sólidos.

3. Transferir las microesferas

Transfiera la cantidad requerida a un tubo o recipiente de procesamiento limpio y de baja unión.

Utilice una punta de pipeta con una abertura adecuada para partículas de 20 µm.

Evite puntas muy estrechas que puedan restringir la transferencia de partículas o contribuir a un muestreo desigual.

4. Lavar las partículas

Lavar las microesferas utilizando un tampón compatible con estreptavidina y el ligando biotinilado seleccionado.

Evite los tampones que contengan biotina libre durante la inmovilización del ligando.

Los posibles métodos de recuperación incluyen:

• Centrifugación a baja o moderada velocidad

• Filtración por membrana

• Sedimentación controlada

• Otros métodos validados de separación sólido-líquido

El método correcto debe determinarse utilizando el material de partículas, la densidad, el tampón, el volumen y los requisitos de recuperación reales.

5. preparar el ligando biotinilado

Diluir el ligando seleccionado en un tampón de unión compatible.

Revisar:

• Concentración de ligando

• Nivel de biotinilación

• Pureza molecular

• Nivel agregado

• Contenido libre de biotina

• Reactivo biotinilado libre

• Aditivos tampón

• Estabilidad de las proteínas

• Estabilidad del ácido nucleico

6. Agregue el ligando

Combine las partículas lavadas con el ligando biotinilado.

Utilice una rotación suave, un balanceo o una mezcla controlada para mantener las partículas en suspensión.

Evite el vórtice excesivo, la formación de espuma, el daño mecánico y la desnaturalización de biomoléculas.

7. Optimizar la incubación

Evaluar:

• Concentración de partículas

• Concentración de ligando

• Relación ligando-partícula

• tiempo de incubación

• Temperatura

• pH del tampón

• Concentración de sal

• Velocidad de mezcla

• Volumen de reacción

La mezcla suave y continua es especialmente importante porque las partículas de 20 µm pueden sedimentarse durante la incubación.

8. Eliminar el ligando libre

Separar y lavar las partículas para eliminar las moléculas biotiniladas no unidas.

Un lavado insuficiente puede aumentar el fondo, mientras que un lavado excesivo puede reducir la recuperación de partículas.

9. Bloquee la superficie de la microesfera

Incubar las partículas cargadas de ligando con un reactivo de bloqueo compatible con la aplicación.

Los posibles bloqueadores incluyen:

• Albúmina sérica bovina

• Caseína

• gelatina de pescado

• Inmunoglobulina no inmune

• Polímeros bloqueantes sintéticos

• Tampones comerciales de bloqueo de microesferas

El bloqueador debería reducir la señal de la muestra negativa sin reducir significativamente la unión específica del objetivo.

10. Resuspender las microesferas preparadas.

Resuspender las partículas recubiertas y bloqueadas en un tampón de ensayo o almacenamiento adecuado.

Evaluar:

• Dispersión de partículas

• Retención de ligando

• Actividad vinculante

• Unión no específica

• Recuperación de partículas

• Comportamiento de asentamiento

• Redispersión

• Estabilidad a corto plazo

• Estabilidad a largo plazo

• Estabilidad microbiana

Flujo de trabajo de ensayos biológicos recomendado

1. preparar las microesferas de captura

Cargue SAPS20UM-10 con la molécula de captura biotinilada seleccionada.

Lave y bloquee las partículas antes de probar la muestra.

2. preparar controles experimentales

Los controles recomendados pueden incluir:

• Blanco de tampón de ensayo

• Microesferas de estreptavidina sin ligando de captura.

• Captura de partículas cargadas de ligando sin objetivo

• muestra negativa

• muestra positiva

• Control exclusivo para reporteros

• control de isotipos

• Control de ligando biotinilado no relevante

• Control de objetivos sin etiquetar

• Controles de un solo color cuando se utiliza fluorescencia

3. Agregue la muestra de prueba

Combine las partículas preparadas con la muestra.

Optimizar:

• Volumen de muestra

• Dilución de muestra

• Concentración de partículas

• Partículas por reacción

• Rango de concentración objetivo

• tiempo de incubación

• Temperatura de incubación

• Método de mezcla

• Matriz de muestra

Mantenga una mezcla suave durante la incubación.

4. Lavar las Microesferas

Elimine los componentes de la muestra no unidos mientras mantiene una recuperación de partículas aceptable.

Registro:

• Número de lavados

• Composición del tampón de lavado

• Volumen de lavado

• Método de separación

• Volumen de sobrenadante residual

• Procedimiento de mezcla

5. Agregue el reactivo de detección

Agregue un reactivo de detección fluorescente, enzimático, colorimétrico, quimioluminiscente u otro compatible.

El sistema de detección seleccionado debe coincidir con el instrumento y el formato de ensayo previstos.

6. Incubar y lavar

Optimice la concentración del reportero y el tiempo de incubación.

Retire el reactivo de detección no unido para reducir el fondo.

7. resuspender para la detección

Resuspender las partículas en un tampón de detección limpio.

Mezcle inmediatamente antes de transferir la muestra al instrumento o cámara de imágenes.

8. Mida la señal

Los posibles resultados analíticos incluyen:

• Fluorescencia de partículas media o mediana

• Porcentaje de partículas positivas

• Relación señal-fondo

• Actividad enzimática asociada a partículas

• Intensidad del color

• Nivel de aglutinación

• Cambios en el recuento de partículas

• Curva dosis-respuesta

• Precisión del ensayo

• Recuperación

• Especificidad

• Reactividad cruzada

9. Analizar los resultados

Establecer umbrales positivos y negativos utilizando controles adecuados.

No defina un resultado positivo utilizando únicamente la muestra de prueba.

Manipulación, mezcla y recuperación de microesferas de 20 µm

Asentamiento

Las microesferas de 20 µm pueden sedimentarse más rápidamente que las partículas más pequeñas.

El asentamiento puede causar:

• Concentración de partículas desigual

• Variación entre alícuotas

• Carga de ligando inconsistente

• Diferentes recuentos de partículas entre reacciones.

• Señales de ensayo variables

• Reproducibilidad reducida

Mezcle la suspensión madre inmediatamente antes de cada paso de muestreo.

Mantener una suspensión uniforme

Los métodos de mezcla adecuados pueden incluir:

• inversión suave

• Rotación de un extremo a otro

• Mezcla orbital lenta

• Balanceo suave

• Vortex controlado antes de su uso.

• Mezcla de pipetas intermitente

Evite la mezcla a alta velocidad que cause formación de espuma o daños a las biomoléculas.

Pipetear

Utilice una abertura para punta de pipeta adecuada.

Durante el muestreo repetido:

1. Mezclar el caldo.

2. Aspire el volumen requerido rápidamente.

3. Dispensar completamente.

4. Mezclar nuevamente antes de la siguiente alícuota.

Centrifugación

Las partículas pueden recuperarse utilizando una fuerza centrífuga más baja o tiempos de centrifugación más cortos que las microesferas más pequeñas, pero las condiciones correctas dependen del material y la densidad de las partículas.

Determinar las condiciones mínimas que proporcionen:

• Recuperación de partículas aceptable

• Un pellet manejable

• Fácil redispersión

• Agregación mínima

• Daño mínimo a las biomoléculas.

Filtración

Se puede utilizar una membrana con un tamaño de poro apropiado para recuperación o lavado.

Confirmar:

• Retención de partículas

• Compatibilidad de biomoléculas

• Baja adsorción no específica

• Recuperación aceptable

• Fácil liberación de partículas

• Compatibilidad con el volumen de procesamiento

Sedimentación controlada

En algunos flujos de trabajo se puede considerar la sedimentación natural o acelerada.

La recuperación basada en sedimentación puede ser más lenta y variable que la centrifugación, pero puede reducir la tensión mecánica.

Microscopía, citometría de flujo y detección de microfluidos.

Microscopía óptica

Las microesferas de 20 µm generalmente se pueden observar mediante microscopía óptica estándar.

Los usos potenciales incluyen:

• Evaluación de morfología

• Inspección agregada

• conteo de partículas

• Visualización de unión de superficies

• Imágenes de interacción célula-partícula

• Evaluación de recuperación

Microscopía de fluorescencia

Si la partícula lleva un indicador fluorescente, un tinte incorporado internamente o un objetivo marcado con fluorescencia, se puede utilizar la microscopía de fluorescencia para evaluar:

• Localización de señal

• Uniformidad de unión

• Partículas positivas y negativas.

• Interacciones célula-partícula

• Poblaciones de partículas multiplex

Citometría de flujo

SAPS20UM-10 se puede evaluar mediante citometría de flujo cuando los fluidos del instrumento son compatibles con partículas de 20 µm.

Antes de usar, confirme:

• Diámetro del tubo de muestra

• Dimensiones de la celda de flujo

• Tamaño de boquilla u orificio

• Caudal de muestra

• Concentración de partículas

• Nivel agregado

• Rango del detector de dispersión

Las partículas deberían permanecer sustancialmente más pequeñas que la vía fluídica más estrecha.

Citometría de flujo por imágenes

El gran tamaño de partícula puede ser útil para estudios de citometría de flujo que combinan fluorescencia asociada a partículas con imágenes morfológicas.

Microfluidos

Confirme que los microcanales, constricciones, filtros y válvulas puedan acomodar partículas de 20 µm sin obstrucciones.

Control de bloqueo y vinculación no específica

La adsorción no específica puede aumentar el fondo y reducir la sensibilidad del ensayo.

Las posibles causas incluyen:

• Bloqueo inadecuado

• Reactivo de bloqueo incompatible

• Exceso de ligando de captura

• Exceso de reactivo de detección

• Lavado insuficiente

• Anticuerpos agregados

• Componentes de muestra hidrofóbicos

• Alta concentración de proteína en la muestra

• Agregación de partículas

• Interferencia muestra-matriz

Analizar múltiples reactivos de bloqueo

Compare varias formulaciones de bloqueo.

El bloqueador preferido debe reducir la señal de la muestra negativa manteniendo al mismo tiempo la unión específica al objetivo.

Optimizar la carga del ligando de captura

La carga máxima de ligando no siempre produce el máximo rendimiento del ensayo.

Una carga excesiva puede:

• Causar apiñamiento estérico

• Reducir la accesibilidad del objetivo

• Aumentar el consumo de reactivos

• Incrementar las interacciones no específicas

• Aumentar la variación del ensayo.

Valorar el reactivo de detección

El exceso de reactivo de detección puede aumentar el fondo.

Pruebe varias concentraciones utilizando controles positivos y negativos.

Optimizar el lavado

Evaluar:

• Número de lavados

• Composición del tampón de lavado

• Volumen de lavado

• Método de separación

• Método de mezcla

• Sobrenadante residual

• Recuperación de partículas

Evalúe los detergentes con cuidado

Una pequeña cantidad de detergente compatible puede mejorar la dispersión de las partículas y reducir la adsorción no específica.

El exceso de detergente puede interferir con las interacciones de biomoléculas o los reactivos de detección.

Comparación de microesferas de 20 µm, 10 µm y 5 µm

Elija SAPS20UM-10 cuando:

• Se requiere una gran superficie de partículas individuales.

• La microscopía directa es importante.

• Se prefiere un modelo de partículas de rango de tamaño de celda.

• Se requiere análisis de partículas individuales.

• Se necesita una identificación clara basada en el tamaño.

• Se está estudiando la manipulación de microfluidos.

• Está prevista una investigación sobre la aglutinación de partículas grandes.

• Es útil una fuerte confirmación visual de la recuperación de partículas.

Elija SAPS10UM-10 cuando:

• Se desea un equilibrio entre un tamaño de partícula grande y una compatibilidad fluida más sencilla.

• La citometría de flujo convencional es un método de detección importante.

• Se requiere una fuerte detección de dispersión.

• Se prefiere una sedimentación inferior a las partículas de 20 µm.

Elija SAPS5UM-10 cuando:

• Se necesita un mayor número de partículas por unidad de masa.

• Se prefiere una sedimentación más baja.

• Se están desarrollando ensayos de flujo estándar basados ​​en perlas.

• Se utilizan volúmenes de reacción más pequeños.

• Es importante una compatibilidad fluida más sencilla.

La selección final debe basarse en la aplicación biológica prevista, la capacidad del instrumento, el número de partículas requerido, la carga de ligando, el comportamiento de sedimentación, el método de recuperación y la plataforma de detección.

Control de calidad y consistencia de lotes

Los posibles parámetros de control de calidad incluyen:

• Diámetro medio de partículas

• Rango de tamaño de partículas

• Distribución del tamaño de partículas

• Coeficiente de variación del tamaño de partícula.

• Morfología de partículas

• Aspecto de la suspensión

• Contenido de sólidos

• Consistencia del recubrimiento de estreptavidina

• Capacidad de unión a biotina

• Dispersión de partículas

• Nivel agregado

• Tasa de liquidación

• Rendimiento de redispersión

• Recuperación de partículas

• Señal de fondo

• Unión no específica

• control microbiano

• Integridad del embalaje

• Estabilidad de almacenamiento

• Consistencia lote a lote

Pruebas de tamaño de partículas

La caracterización del tamaño de las partículas puede informar:

• Diámetro medio

• Diámetro mediano

• Rango de tallas

• Distribución de tallas

• Coeficiente de variación

• Resultados de microscopía

• Datos instrumentales del tamaño de partículas.

El método de medición debe indicarse al informar los resultados del tamaño de las partículas.

Capacidad de unión a biotina

La capacidad de unión debe medirse con una sonda biotinilada definida.

El resultado medido puede verse influenciado por:

• Tipo de sonda

• tamaño molecular

• Nivel de biotinilación

• Pureza de la sonda

• Condiciones de incubación

• Composición del búfer

• Método de detección

• Base de cálculo

Los valores obtenidos utilizando diferentes sondas o métodos pueden no ser directamente comparables.

Control de calidad funcional

Un ensayo de control de calidad funcional puede evaluar:

• Unión de una sonda biotinilada estandarizada.

• Porcentaje de partículas positivas

• Distribución de señal

• Separación de fondo

• Recuperación de partículas

• Población agregada

• Repetibilidad

• Redispersión después del almacenamiento.

Documentación específica del lote

La documentación disponible puede incluir:

• Certificado de Análisis

• Especificación del producto

• Resultados del tamaño de partícula

• Resultados del contenido de sólidos

• Resultados de capacidad de unión

• Ficha de datos de seguridad

• Instrucciones de manejo

• Recomendaciones de almacenamiento

• Número de lote

• fecha de producción

Las pruebas de liberación requeridas y los criterios de aceptación deben acordarse antes de la fabricación a granel.

Fabricación a granel y personalización

Shanghai SanYu Biotechnology Co., Ltd. suministra microesferas de estreptavidina SHBC para investigación de laboratorio, desarrollo piloto, producción repetida y compra empresarial a granel.

Evaluación de muestras de investigación

Las muestras pueden evaluarse para:

• Morfología de partículas

• Dispersión de partículas

• Actividad de estreptavidina

• Carga de ligando biotinilado

• Unión no específica

• Recuperación de partículas

• Viabilidad del ensayo

• Compatibilidad con microscopía

• Compatibilidad con el sistema de flujo

• Sedimentación y redispersión

Desarrollo a escala piloto

Los lotes piloto pueden admitir:

• Optimización del ensayo

• Verificación de capacidad vinculante

• Estudios de estabilidad

• Selección de búfer

• Evaluación conservante

• Evaluación de embalaje

• Desarrollo de control de calidad

• Verificación del cliente

• Transferencia de proceso

Producción a granel

La fabricación a granel se puede organizar una vez que se hayan confirmado los requisitos técnicos y las especificaciones de lanzamiento.

Por favor proporcione:

• Cantidad requerida

• Demanda anual esperada

• Tamaño de paquete preferido

• Aplicación biológica prevista

• Diámetro de partícula requerido

• Contenido de sólidos requerido

• Capacidad de encuadernación requerida

• Tipo de ligando biotinilado

• Requisitos de búfer

• Restricciones conservantes

• Requisitos de control de calidad

• Requisitos de documentación

• Calendario de entrega

• Destino de entrega

Diámetro de partícula personalizado

Se pueden discutir tamaños de partículas alternativos según la aplicación y la viabilidad de fabricación.

Carga personalizada de estreptavidina

Se pueden evaluar los niveles de recubrimiento de estreptavidina o los objetivos de capacidad de unión específicos del proyecto.

Fluorescencia personalizada o codificación de colores

Para proyectos de imágenes y multiplex, se pueden discutir microesferas de estreptavidina codificadas con fluorescencia o visiblemente coloreadas.

Las opciones potenciales pueden incluir:

• Diferentes longitudes de onda de excitación.

• Diferentes longitudes de onda de emisión

• Múltiples colores de fluorescencia

• Múltiples intensidades de fluorescencia

• Colores de partículas visibles

• Sistemas de codificación específicos del cliente

Buffer y concentración personalizados

Se pueden evaluar concentraciones de sólidos, formulaciones de tampón, tensioactivos, sistemas conservantes y formatos de envasado alternativos.

Suministro de OEM y marcas privadas

Los formatos de cooperación disponibles pueden incluir:

• Embalaje OEM

• Etiquetas específicas del cliente

• Suministro de marca privada

• Números de catálogo específicos del cliente

• Suministro de materia prima a granel

• Documentos técnicos personalizados

• Especificaciones de lanzamiento específicas del cliente

Recomendaciones de almacenamiento y estabilidad

Siga la etiqueta del producto final, la ficha técnica y el Certificado de Análisis específico del lote.

Las recomendaciones generales incluyen:

• Almacenar en las condiciones de refrigeración especificadas.

• No congelar a menos que se haya validado la estabilidad de congelación y descongelación.

• Mantener el recipiente bien cerrado.

• Guarde el vial en posición vertical.

• Mezclar bien antes de tomar la muestra.

• Mantener las partículas en suspensión durante el procesamiento.

• Utilice puntas de pipeta limpias y tubos de baja unión.

• Evite la contaminación de la suspensión original.

• No permita que las partículas se sequen.

• Evite repetidos cambios de temperatura innecesarios.

• No devuelva el material diluido al contenedor original.

• Registre el número de lote del producto y la fecha de apertura.

Las partículas recubiertas de estreptavidina generalmente deben permanecer en líquido durante el almacenamiento y manipulación. El secado o la congelación pueden reducir el rendimiento. y reducir el rendimiento. citaturn146812search1turn146812search5

Asentamiento y Resuspensión

Debido a que SAPS20UM-10 contiene partículas grandes, puede ocurrir una sedimentación rápida.

Antes de usar:

1. Deje que el vial alcance la temperatura de manipulación recomendada.

2. Invierta o gire suavemente el vial.

3. Aplique agitación controlada cuando sea necesario.

4. Confirmar que la suspensión sea homogénea.

5. Mezclar inmediatamente antes del muestreo.

6. Inspeccione si hay agregados irreversibles.

El asentamiento reversible no necesariamente indica falla del producto.

Evite el secado

No permita que el pellet de partículas se seque durante el lavado.

El secado puede causar:

• Agregación irreversible

• Actividad reducida de la estreptavidina.

• Difícil redispersión

• Mayor fondo de ensayo

• Recuperación reducida de partículas

Evite la congelación

La congelación puede causar:

• Agregación de partículas

• Cambios en la estabilidad de la suspensión.

• Actividad proteica reducida

• Recuperación reducida de partículas

• Mayor variabilidad del ensayo.

Evaluar la estabilidad del reactivo preparado

Las microesferas bloqueadas y cargadas con ligando pueden tener una estabilidad diferente a la de la suspensión SAPS20UM-10 original.

Evaluar el reactivo preparado final bajo las condiciones previstas de almacenamiento, transporte y operación.

Guía de solución de problemas

Unión débil del ligando biotinilado

Posibles causas:

• Biotina libre en el buffer

• Reactivo biotinilado no eliminado

• Biotinilación de ligando bajo

• Grupos de biotina inaccesibles

• Concentración de ligando insuficiente

• Tiempo de incubación inadecuado

• Estreptavidina inactiva

• Búfer incompatible

• Sedimentación de partículas durante la incubación.

Acciones recomendadas:

• Elimina la biotina libre.

• Purificar el ligando biotinilado.

• Verificar la biotinilación.

• Evalúe un espaciador adecuado.

• Mantenga una mezcla suave.

• Aumente gradualmente la concentración de ligando.

• Pruebe un ligando biotinilado de control positivo.

Señal de fondo alta

Posibles causas:

• Bloqueo insuficiente

• Exceso de reactivo de detección

• Lavado inadecuado

• Adsorción de reactivos no específicos.

• Interferencia muestra-matriz

• Anticuerpos agregados

• Exceso de carga de ligando de captura

Acciones recomendadas:

• Compara diferentes bloqueadores.

• Valorar el reactivo de detección.

• Optimizar el lavado.

• Retire los agregados de proteínas cuando sea apropiado.

• Diluir la muestra.

• Reducir la carga del ligando de captura.

Resultados desiguales entre alícuotas

Posibles causas:

• Sedimentación rápida de partículas

• Mezcla de caldo inadecuada

• Retraso entre la mezcla y el muestreo.

• Abertura estrecha para punta de pipeta

• Técnica de transferencia inconsistente

Acciones recomendadas:

• Mezclar inmediatamente antes de cada alícuota.

• Utilice una punta de pipeta adecuada.

• Mantenga una mezcla lenta y continua durante la dispensación repetida.

• Estandarizar el intervalo de muestreo.

Agregación de partículas

Posibles causas:

• Búfer incompatible

• pH extremo

• Alta fuerza iónica

• Congelación

• El secado

• Carga excesiva de ligando

• Estabilizador insuficiente

• Contaminación microbiana

Acciones recomendadas:

• Evaluar la compatibilidad del buffer.

• Evite congelar y secar.

• Optimice la carga de ligandos.

• Utilice una mezcla suave y controlada.

• Revisar los requisitos de estabilizadores y conservantes.

Baja recuperación de partículas

Posibles causas:

• Pérdida durante la eliminación del sobrenadante.

• Adhesión a tubos

• Tamaño de poro del filtro incorrecto

• Sedimentación incompleta

• Transferencia incompleta

• Lavado excesivo

• Partículas que se asientan dentro de las puntas de las pipetas

Acciones recomendadas:

• Utilice tubos de baja unión.

• Optimice las condiciones de separación.

• Validar la membrana del filtro.

• Mezclar antes de cada transferencia.

• Reduzca los pasos de lavado innecesarios.

• Dejar un volumen residual controlado encima del pellet.

Preguntas frecuentes

¿Qué es SAPS20UM-10?

SAPS20UM-10 es una suspensión de microesferas recubiertas de estreptavidina de 20 µm suministrada con un 1 % de sólidos para capturar biomoléculas biotiniladas en investigaciones biológicas y ensayos basados ​​en perlas.

¿Qué es la marca SHBC?

SHBC es la marca de microesferas y materiales biotecnológicos de Shanghai SanYu Biotechnology Co., Ltd.

¿Cuál es el diámetro nominal de partícula?

El diámetro nominal de las partículas es de 20 µm.

El diámetro medido, el rango de tamaño y la distribución del tamaño de las partículas deben confirmarse mediante la documentación específica del lote.

¿Cuál es el contenido de sólidos?

SAPS20UM-10 se suministra con 1% de sólidos.

¿Son magnéticas las microesferas SAPS20UM-10?

No se debe asumir que el producto es magnético a menos que las propiedades magnéticas se indiquen específicamente en las especificaciones del producto.

Para la separación magnética, seleccione un producto descrito específicamente como perlas magnéticas de estreptavidina.

¿Las microesferas son fluorescentes?

No se debe suponer que el producto estándar contiene un tinte fluorescente interno a menos que se indique específicamente la fluorescencia.

Se puede considerar una versión codificada con fluorescencia como producto personalizado.

¿Qué moléculas pueden unirse a SAPS20UM-10?

La superficie de estreptavidina puede capturar anticuerpos, antígenos, proteínas, péptidos, enzimas, receptores, oligonucleótidos, ADN, ARN, aptámeros y otras moléculas que contienen biotina biotinilados.

¿Puede un anticuerpo no modificado unirse directamente?

Un anticuerpo no modificado no se unirá específicamente a través de la interacción estreptavidina-biotina a menos que primero se biotinile o se conecte a través de otro reactivo compatible.

¿Se requiere la activación de EDC/NHS?

Normalmente no se requiere la activación de EDC/NHS cuando se carga una molécula biotinilada en microesferas recubiertas de estreptavidina.

¿Cuál es la capacidad de unión a biotina?

La capacidad de unión debe confirmarse utilizando la especificación del producto o el Certificado de Análisis específico del lote.

No debe estimarse únicamente a partir del contenido de sólidos.

¿Por qué elegir microesferas de 20 µm?

Las partículas de 20 µm proporcionan una gran superficie por partícula individual, una visibilidad microscópica clara, dimensiones del rango de tamaño de las células y una identificación conveniente de las partículas.

¿Las microesferas de 20 µm tienen más superficie que las partículas más pequeñas?

Cada partícula de 20 µm tiene más superficie que cada partícula más pequeña.

Sin embargo, las partículas más pequeñas generalmente proporcionan más partículas y una mayor superficie total por unidad de masa.

¿Por qué las partículas se depositan rápidamente?

Las partículas grandes suelen sedimentarse más rápido que las microesferas más pequeñas.

Mezcle el caldo inmediatamente antes del muestreo y mantenga una mezcla suave durante la incubación.

¿Se puede utilizar SAPS20UM-10 en citometría de flujo?

Puede evaluarse en citometría de flujo cuando los fluidos del instrumento, la celda de flujo y la ruta de la muestra son compatibles con partículas de 20 µm.

¿Se puede utilizar para microscopía?

Sí. El gran tamaño de partícula es adecuado para la evaluación mediante microscopía óptica, de fluorescencia o confocal.

¿Se puede utilizar SAPS20UM-10 como modelo de celda?

El tamaño de 20 µm puede resultar útil en la investigación de partículas en el rango de tamaño de las células.

Sin embargo, las microesferas sintéticas no reproducen todas las propiedades ópticas, mecánicas, químicas o biológicas de las células vivas.

¿Se pueden utilizar las microesferas para inmunoensayos?

Sí. Se puede inmovilizar un anticuerpo de captura biotinilado en la partícula, seguido de la captura del objetivo y la detección con un indicador apropiado.

¿Se pueden utilizar las partículas para la captura de ácidos nucleicos?

Sí. Se pueden evaluar oligonucleótidos biotinilados, ADN, ARN, productos de PCR y aptámeros para determinar su inmovilización y captura del objetivo.

¿Se puede utilizar SAPS20UM-10 en ensayos multiplex?

Sí, siempre que la población de 20 µm pueda distinguirse de otras poblaciones de partículas.

Se puede considerar la codificación de tamaño, codificación de fluorescencia o codificación de colores.

¿Cómo se deben lavar las partículas?

El método de lavado depende del material de las partículas, la densidad, el tampón, el volumen y la recuperación requerida.

Se podrá evaluar la centrifugación, filtración o sedimentación controlada.

¿Cómo se puede reducir la unión no específica?

Optimice el reactivo de bloqueo, la concentración del ligando de captura, la concentración del reactivo de detección, las condiciones de lavado, el nivel de detergente, la dilución de la muestra y el tiempo de incubación.

¿Se pueden utilizar tampones que contengan biotina libre?

La biotina libre puede ocupar sitios de unión de estreptavidina y, en general, debe evitarse durante la carga del ligando de captura.

¿Se debe diluir el producto antes de su uso?

Sí. Prepare una concentración de trabajo de acuerdo con el número de partículas requerido, el volumen de ensayo y el método de detección.

¿Se puede congelar SAPS20UM-10?

Por lo general, no se recomienda la congelación a menos que se haya validado específicamente la estabilidad de congelación y descongelación.

¿Se puede personalizar la concentración?

Se pueden discutir concentraciones de sólidos alternativas de acuerdo con los requisitos del proyecto y la viabilidad de fabricación.

¿Se puede personalizar la capacidad de encuadernación?

Se pueden evaluar los niveles de recubrimiento de estreptavidina o los objetivos de capacidad de unión específicos del proyecto.

¿Se pueden producir microesferas fluorescentes de estreptavidina de 20 µm?

Se pueden analizar microesferas de estreptavidina de 20 µm codificadas con fluorescencia o de colores visibles para proyectos calificados de imágenes, microfluidos y multiplex.

¿Está disponible la producción a granel?

Sí. Shanghai SanYu Biotechnology Co., Ltd. admite muestras, lotes piloto, pedidos repetidos, proyectos OEM y producción a granel.

¿Qué información se requiere para una cotización?

Por favor proporcione:

• Número de catálogo SAPS20UM-10

• Cantidad requerida

• Volumen de compras anual esperado

• Tamaño de paquete preferido

• Aplicación biológica prevista

• Tipo de ligando biotinilado

• Capacidad de encuadernación requerida

• Número requerido de partículas por prueba

• Método de detección

• Restricciones de búfer

• Restricciones conservantes

• Requisitos de control de calidad

• Requisitos de documentación

• Destino de entrega

Solicite una muestra o una cotización al por mayor

Las microesferas de estreptavidina SHBC SAPS20UM-10 de 20 µm proporcionan una plataforma de partículas grande y claramente identificable para inmovilizar anticuerpos, proteínas, péptidos, enzimas, receptores, oligonucleótidos, ADN, ARN, aptámeros y otras moléculas marcadas con biotina.

El producto es adecuado para:

• Desarrollo de ensayos biológicos.

• Inmunoensayos basados ​​en perlas

• Inmovilización de anticuerpos

• Investigación de interacción de proteínas.

• Captura de ácido nucleico

• Ensayos de hibridación

• Estudios de interacción célula-partícula.

• Microscopía e imagen

• Investigación de microfluidos

• Investigación sobre aglutinación

• Sistemas multiplex codificados por tamaño

• Fabricación de reactivos de investigación.

SAPS20UM-10 proporciona:

• Diámetro nominal de partícula de 20 µm

• Superficie funcional de estreptavidina

• suspensión al 1% de sólidos

• Gran superficie por partícula individual

• Visibilidad microscópica clara

• Compatibilidad con biomoléculas biotiniladas

• Suministro de muestras y lotes piloto.

• Capacidad de fabricación a granel

• OEM y soporte de desarrollo personalizado

Para la evaluación de muestras o la compra al por mayor, proporcione la aplicación prevista, la cantidad requerida, el ligando biotinilado, la capacidad de unión deseada, la plataforma de detección, los requisitos de embalaje y las especificaciones de control de calidad.

Nombre del producto: Microesferas de estreptavidina de 20 µm
Número de catálogo: SAPS20UM-10
Marca: SHBC
Fabricante: Shanghai SanYu Biotechnology Co., Ltd.
Diámetro nominal de partícula: 20 µm
Modificación de la superficie: Estreptavidina
Contenido de sólidos: 1 %
Aplicación principal: Investigación biológica y ensayos basados ​​en perlas
Capacidad de suministro: Muestras, lotes piloto y producción a granel
Uso previsto: Solo para uso en investigación. No para uso diagnóstico o terapéutico.